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RELATÓRIO DE PRÁTICA 
Anderson Luciano: 01668768 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
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RELATÓRIO 
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DATA: 
 
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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana 
 
DADOS DO(A) ALUNO(A): 
 
NOME: Anderson Luciano Lemos de Siqueira MATRÍCULA: 01668768 
CURSO: Nutrição POLO: Uninassau Caruaru 
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Rosilma Oliveira 
 
 
RELATÓRIO: 
 
ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Primeiro foi realizado a hidrolise química utilizando-se uma solução de amido a 1% que seria 
o composto a ser ou não degradado. Com a utilização da proveta foi adicionado 30ml de 
amido em um Becker e com a utilização da pera de borracha foi adicionado 3ml da solução 
de ácido clorídrico em seguida foi realizado movimentos para homogeneizar. 
 
Segundo foi realizado o procedimento para a hidrolise enzimática. Também se utilizando a 
solução de amido a 1% foi adicionado 30ml do mesmo a um Becker, em seguida foi 
adicionado 3ml da solução amilase salivar. 
 
Nos tubos utilizados para o teste de reações enzimáticas foram adicionados 5ml de água 
mais 5ml do reagente preparado anteriormente em cada um dos tubos com a uso de pera 
de borracha e pipeta; 
Nos tubos utilizados para o teste de reações químicas foram adicionados 5ml do reagente 
preparado anteriormente em cada um dos tubos; 
 
Materiais: 
 
• 3 tubos para realização da atividade química 
• 3 tubos para a realização da atividade enzimática 
• Banho de gelo 
• Banho maria 
• Proveta Becker 
• Pera de borracha 
• Pipeta 
 
Reagentes: Amilase salivar, Ácido clorídrico, Amido 1%, Lugol 2%. 
 
A partir desse processo será realizada as etapas para verificar se as mudanças de 
temperatura interferem no processo de hidrolise tanto na química quanto na enzimática. 
Primeiro passo: 
 
 
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DATA: 
 
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• Foram adicionados os tubos A1 de ambas as hidrólises no banho de gelo em torno de 
1 minuto; 
 
• Enquanto o tubo A2 de ambas as hidrólises foram adicionados ao banho maria 
durante 10 minutos com temperatura em torno de 70º e posteriormente no banho de 
gelo; 
 
• E os tubos A3 de ambos foram adicionados ao banho maria durante 20 minutos e 
posteriormente ao banho de gelo. 
 
Para visualizar a reação de hidrolise foi utilizado a solução de Lugol a 2% onde tem uma 
concentração de iodo que reage com o composto do amido formando uma cor verde 
escuro e azul. Onde foram adicionadas 5 gotas de Lugol em cada tudo de ambas as 
hidrolise. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Qual a composição bioquímica do amido? 
 
O amido é uma molécula complexa formada por várias moléculas de glicose. Formado 
por cadeias de amilose e/ou amilopectina. A amilose é formada por unidades 
de glicose unidas por ligações glicosídicas α-1,4, e a amilopectina é formada por 
unidades de glicose unidas por ligações glicosídicas α-1,4 e α-1,6. 
 
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise 
química do amido? 
 
É promover a quebra das ligações glicosídicas presentes no amido, transformando-o em 
moléculas menores, como a glicose. O HCl atua como um catalisador ácido, acelerando 
a reação de hidrólise. 
 
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose. 
 
Com a mastigação há liberação da enzima α-amilase, presente na saliva. Ela catalisará 
a hidrólise nas ligações glicosídicas (α1 → 4) da amilose, resultando em maltose, glicose 
e amilopectina; e das ligações (α1 → 4) da amilopectina, resultando em dextrina, mistura 
de polissacarídeos. 
 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico. 
 
Nos tubos A1: após o banho de gelo tanto no enzimático quanto na química não houve 
hidrolise, ambos demonstram a presença do amido após adição do Lugol reagindo 
deixando coloração verde escuro, com o tempo percebe-se a degradação do amido. 
 
Nos tubos A2: após 10 minutos no banho maria seguido do banho de gelo, tanto no 
enzimático quanto na química não houve hidrolise, ambos demonstram a presença do 
https://mundoeducacao.uol.com.br/quimica/glicidios.htm
https://mundoeducacao.uol.com.br/quimica/glicose-diabetes.htm
 
 
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amido após adição do Lugol reagindo deixando coloração azul escuro, não havendo 
degradação do amido indicando que a temperatura influencia na reação da atividade 
química. 
 
Nos tubos A3: após 20 minutos no banho maria seguido do banho de gelo tanto no 
enzimático quanto na química não houve hidrolise, ambos demonstram a presença do 
amido após adição do Lugol reagindo deixando coloração azul escuro. 
 
 
REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E 
CETOSES) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Essa prática segue os mesmos princípios teóricos que embasam a reação de Molisch, 
onde há formação de furfural e hidroximetilfurfural (HMF). Como vimos, esses dois 
produtos, isoladamente, são incolores. Assim, adiciona-se um composto fenólico ao meio 
para que seja desenvolvida coloração visível (nesse caso, vermelha). A reação de 
Seliwanoff só se diferencia da reação de Molisch nos reagentes utilizados: o ácido que 
causará a desidratação do carboidrato é o ácido clorídrico (HCl) e o fenol que reage como 
o furfural e HMF é o resorcinol. Esse teste permite diferenciar aldoses de cetoses porque 
a reação com a cetose é mais rápida e mais intensa. Isso porque a formação do furfural 
é mais fácil que a formação do hidroximetilfurfural. 
 
Materiais utilizados: 
 
• Solução 1ml de frutose 
• Solução 1ml de glicose a 1% 
• Água destilada 1ml 
• Ácido clorídrico (HCL) 1,5ml para cada tubo 
• Seliwanoff 0,5ml em cada tubo 
• 3 Tubos de ensaio 
• Conta-gotas 
• Pipeta de 5 mL 
• Becker 
• Banho-Maria 
• Reagente de Seliwanoff 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff? 
 
O teste de Seliwanoff é um teste químico que permite distinguir aldoses de cetoses, no 
qual esse teste baseia-se no princípio de que, quando aquecidas, as cetoses sofrem 
desidratação muito mais rapidamente que as aldoses. 
 
 
 
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b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada? 
 
A finalidade de usar um tubo apenas com água destilada no teste de Seliwanoff baseia-
se na determinação e distinção de aldoses de cetoses, isso pode ser observado pela cor 
da reação, ou seja, se o resultado for vermelho intenso, é positivo para cetoses e uma 
cor rosa é um teste positivo para aldoses. 
 
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff? 
 
A função do ácido clorídrico no teste de Seliwanoff é para desidratar os carboidratos, mas 
para que ocorra esse processo é preciso que haja energia no meio, e essa energia vem 
da fervura. Ao desidratar os carboidratos, o HCL forma furfurais e assume a coloração 
vermelha. 
 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose 
e cetoses. 
 
• Tubo da glicose permaneceu inalterado, confirmando que não é uma cetose, ou 
seja, não tem produção do furfural e reação com o resorcinol. 
 
• Tubo da frutose teve uma reação proeminente para a cor vermelha indicando a 
reação com o resorcinol com o furfural. 
 
• Tubo da água que é o controle negativo permaneceu inalterado. 
 
 
 
PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Este procedimento é realizado paraverificar a influência de sais de metais pesados e de 
ácidos fortes sobre a solubilidade da proteína, bem como a influência do pH sobre a carga 
líquida da molécula polipeptídica. 
 
Materiais utilizados: 
 
• Ácido tricloroacético a 20% 
• Acetato de chumbo 10% 
• Ovoalbumina 10% 
• 2 tubos de ensaio 
• Pipeta 
• Pera de borracha 
 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
 
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a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados? 
 
Na presença de ácidos fortes, ocorre a protonação dos grupos carboxílicos e a diminuição 
do pH, o que leva à neutralização da carga elétrica da proteína. Com isso, as forças de 
atração entre as moléculas de ovoalbúmina aumentam, levando à sua precipitação. 
 
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação. 
 
Ela se torna insolúvel após a precipitação devido a mudanças em sua estrutura 
tridimensional. A precipitação ocorre quando a ovoalbumina é exposta a condições 
adversas, como mudanças de pH, temperatura ou adição de agentes precipitantes, como 
álcool ou sais metálicos. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
• Tubo de ácido forte: a precipitação foi imediata, reagindo formando um líquido 
leitoso, indicando a precipitação e a formação de alguns aglomerados de 
proteínas. 
 
• Tubo de metal pesado: houve precipitação menos intensa do que no ácido forte. 
 
 
PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Esse processo é importante para a separação das proteínas, levando em conta que a 
concentração de sal necessária para a precipitação é diferente para cada proteína. 
 
Materiais utilizados: 
 
• Ovoalbumina a 10% 
• Solução de sulfato de amônia concentrada 
• Água destilada 
• 2 tubos 
• Pipeta de vidro 
• Pera de borracha 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? 
 
Salting out ocorre quando a adição de sal leva à precipitação de substâncias insolúveis, 
enquanto salting in leva à solubilização de substâncias inicialmente insolúveis. 
 
 
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A camada de solvatação é uma camada de moléculas solventes ao redor de uma 
partícula ou íon, estabilizando-a em solução. 
 
b) Qual o princípio bioquímico do experimento? 
 
Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica 
(aumento da concentração de íons) do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas 
quantidades de sal a uma solução contendo proteínas, as cargas provenientes da 
dissociação do sal passam a interagir com as moléculas proteicas, diminuindo 
a interação entre elas 
 
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento. 
 
• Tubo A: vemos a presença de um precipitado esbranquiçado que 
demonstra a precipitação das proteínas da ovoalbumina (proteína do ovo) em 
concentração salina como sulfato de amônio. 
 
• Tubo B: onde foi colocada a água destilada não conseguimos perceber a formação 
desse precipitado. 
 
 
REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Os açúcares redutores são alguns carboidratos que apresentam estrutura que é uma 
hidroxila em um dos carbonos que é o C1. A hidroxila ela consegue reagir com diversos 
íons principalmente metálicos, a reação se baseia nessa ligação onde a carbonila vai se 
ligar a um reativo que é chamado reativo de Benedict. Esses reativos contem íons 
cúpricos que ao reagir com essa carbonila forma um composto chamado de oxido 
cuproso. O reagente tem uma cor azul intenso. A reação positiva dessa junção entre a 
carbonila do açúcar redutor com o íon cúprico do reativo forma um composto vermelho 
tijolo que é uma coloração bem diferenciada desse reativo. 
 
Materiais utilizados: 
 
Reagentes: Glicose 1%; Solução de sacarose 1%; Reativo de Benedict; Água (controle 
negativo) 
 
Equipamentos: Pera de borracha; Pipeta; Becker; Banho maria (70 graus por 5 minutos) 
 
A partir dessa reação conseguimos identificar quais são os principais açúcares redutores. 
A reação não ocorre após a imediata colocação do material. É necessária uma 
reação a quente onde vamos utilizar o banho maria para realizar reação. 
Tubo glicose: adicionar 5 ml do reativo de Benedict, 5 ml de glicose, 
homogeneizar, levar a banho maria por 5 minutos. Houve reação, uma 
modificação, porém não é uma reação de uma cor vermelho tijolo, mas essa modificação 
 
 
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para a cor esverdeada indica que houve de fato uma redução dos íons, reação do cobre, 
neste caso não a formação do ácido cuproso, já foi reduzido ao máximo o cobre, mas 
conseguimos perceber uma diferença entre a sacarose e a glicose. Isso significa que a 
glicose a aldose é um agente redutor (monossacarídeo) e a frutose, e a sacarose não 
são redutoras. 
Tubo sacarose: adicionar 5ml do reativo de Benedict; adicionar 5ml de sacarose; 
homogeneizar, levar a banho maria por 5 minutos. Não teve reação, a coloração que está 
no tubo é do reativo de Benedict (azul). 
Tubo água: Adicionar 5ml do reativo de Benedict; adicionar 5ml de sacarose; 
homogeneizar, levar a banho maria por 5 minutos. Não teve reação. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento. 
 
O Reagente de Benedict é uma solução de sulfato de cobre, carbonato de sódio e citrato 
de sódio em água. É usado para detectar a presença de certos tipos de carboidratos 
conhecidos como açúcares redutores. Estas substâncias podem ser submetidas a 
reações químicas em que se dão electrões para outros compostos, o que resulta na 
produção de novas substâncias, e eles reagir desta maneira com reagente de Benedict 
para produzir um composto insolúvel, de cor avermelhada. 
 
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”? 
 
Um açúcar redutor é qualquer açúcar que, em solução básica, apresenta um grupo 
carbonílico livre aldeído (derivado de uma aldose). Sua capacidade de redução se dá 
pela presença de um grupo aldeído ou cetona livre. Todo monossacarídeo, alguns 
dissacarídeos e oligossacarídeos. As cetonas precisam entrar em equilíbrio 
dinâmico e se tornarem aldeídos antes de poderem atuar como açúcares redutores. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Tubo de glicose: Com a solução em banho maria a 70 graus, após 5 minutos houve uma 
modificação, porém não é uma reação de coloração vermelho tijolo, mas a modificação 
de cor esverdeada indica que houve uma redução dos íons, uma reação do cobre. E 
nesse caso não há formação do ácido cuproso, já foi reduzido ao máximo o cobre. É 
perceptível a diferença entre a sacarose e a glicose, isso significa que a aldose é um 
agente redutor (monossacarídeo) e a a sacarose não é redutora. 
 
Tubo da sacarose: Com a solução em banho maria a 70 graus, após 5 minutos não houve 
uma reação entre os íons. Significa que a sacarose não é um carboidrato redutor, ou seja, 
ele não tem a hidroxila, a carbonila que faz a reação com os íons cúpricos. 
 
Tubo da água: Com a solução em banho maria a 70 graus, após 5 minutos não houve 
uma reação. A cor que está no tubo é do reativo de Benedict (azul). Não houve mudança 
de cor. 
 
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica. 
 
 
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Na área clínica, o teste de Benedict pode ser utilizado para monitorara diabetes, uma 
vez que a doença é caracterizada por altos níveis de glicose no sangue. O teste pode ser 
realizado em amostras de urina para detectar a presença de glicose, indicando a 
presença de diabetes. 
 
 
 
REAÇÃO DE BIURETO 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
As proteínas são biomoléculas importantíssimas para configuração do nosso corpo. 
Fazem parte da formação das membranas celulares, podem função enzimática, estrutural 
e para que seja possível caracterizar o tipo de proteína que se tem interesse na reação 
de Biureto, um reagente que ao se ligar com os peptídeos das proteínas resultando na 
cor violácea. 
 
Materiais utilizados: 
 
• Pipetas; 
• Pêra de borracha; 
• Tubos de ensaio; 
• Estantes para tubos; 
• Ovoabulmina10%; 
• Solução de Biureto; 
• Água destilada. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto. 
 
A reação do Biureto é resultado da formação de um complexo entre Cu +2 e as proteínas 
ou peptídeos com mais de dois aminoácidos. As ligações peptídicas são ligações amida, 
e o par de elétrons dos átomos de nitrogênio das amidas encontram-se disponíveis, 
podendo o princípio do biureto reativo é a identificação de compostos de proteínas, 
porque as ligações presentes na molécula de biureto são semelhantes as ligações 
peptídicas na formação de proteínas. 
 
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas? 
 
O reagente biureto é uma solução de sulfato de cobre (CuSO 4) e bitartarato de sódio e 
potássio (KNaC4H4O6) são formados quando reagem com íons de cobre, produto 
violeta. A reação do biureto é positiva para proteína (peptídeo com três ou mais resíduos 
de aminoácidos). A reação também é muito positiva para aqueles que contêm dois grupos 
 
 
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carbonil diretamente conectados (-CONH2) ou através de um único átomo carbono ou 
nitrogênio. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
No tubo A (ovalbumina), o teste foi positivo. Houve uma coloração violeta, confirmando a 
presença de proteína. No tubo de controle experimental B (água destilada), o resultado 
foi negativo, conforme o esperado. 
 
REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Os polissacarídeos são sacarídeos que são compostas macromoléculas, temos na 
classificação dos carboidratos que são chamados de açúcares, os manômetros, os 
monossacarídeos, dissacarídeos e o polissacarídeos, dentre os polissacarídeos mais 
comuns que encontramos na natureza e principalmente de âmbito vegetal, temos o 
amido. O amido faz parte da nossa alimentação onde encontramos ele em diversos 
alimentos. 
 
Matetiais utilizados: 
 
• 2 Pipeta de vidro de 1ml; 
• 2 Tubos de ensaio; 
• Solução Lugol 2%; 
• Solução de amido 1%; 
• Pêra de borracha; 
• Pipeta; 
• Pasteur; 
• Água destilada. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos. 
 
O princípio bioquímico dessa técnica está relacionado à interação entre o amido e o iodo 
presente na solução de Lugol. 
 
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
 
A técnica da reação do Lugol pode ser utilizada em diversas situações em que se deseja 
identificar a presença de amido ou outros polissacarídeos em amostras biológicas ou em 
produtos de interesse. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
 
 
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A primeira amostra houve alteração de cor, ficou azul escuro meio esverdeado. Indicando 
a presença do amido. 
 
A segunda amostra houve alteração de cor ficando amarelo meio amarronzado o que 
indica a ausência do amido. 
 
REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
A saponificação nada mais é do que uma reação que cria um sal orgânico e um álcool 
por meio de um éster de base inorgânica em uma solução aquosa. Em outras palavras, 
a mistura do éster, uma substância resultante da reação entre um álcool e um ácido, com 
uma base resulta em um sal orgânico, também chamado de sabão. 
 
Materiais utilizados: 
 
• 4 Pipetas de vidro de 5ml; 
• 2 Pipetas de vidro de 1ml; 
• 3 Tubos de ensaio; 
• Solução de hidróxido de potássio 10%; 
• Solução de Cloreto de Cálcio; 
• Óleo de milho; 
• Pera de borracha; 
• Banho maria. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos. 
 
Os ácidos graxos são moléculas compostas principalmente por uma cadeia de 
hidrocarbonetos com um grupo carboxila (-COOH) na extremidade. Eles são os principais 
componentes dos lipídios, que são uma classe de moléculas orgânicas que incluem 
gorduras, óleos e fosfolipídios. Os ácidos graxos podem variar em comprimento de 
cadeia, saturação e estrutura, e essas variações afetam suas propriedades físicas e 
biológicas. 
 
Os triglicerídeos, por outro lado, são ésteres formados pela ligação de três ácidos graxos 
a uma molécula de glicerol. O glicerol é uma molécula de álcool com três grupos hidroxila 
(-OH), cada um dos quais pode se ligar a um ácido graxo. Essas ligações ocorrem através 
de reações de esterificação, formando a estrutura básica dos triglicerídeos, que são a 
forma de armazenamento de gordura em organismos vegetais e animais. 
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
 
 
 
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A saponificação é uma reação química que envolve a hidrólise alcalina de ésteres, 
especialmente os ésteres de ácidos graxos, como os triglicerídeos, para formar seus 
componentes constituintes, ácidos graxos e glicerol, sob condições alcalinas. Esta reação 
é frequentemente usada na produção de sabão a partir de óleos ou gorduras. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
No tubo 1, misturamos óleo com solução de potassa alcoólica e aquecemos no banho-
maria a 70ºc durante cinco minutos. Ao retirar, percebemos a presença da hidrólise onde 
ocorre a homogeneização do óleo com a solução de potássio, ao misturar com água essa 
solução e agitar bem, mostra claramente a presença de espuma indicando a presença 
de sais de ácidos graxos. 
 
No tubo 2, foi posto 2ml da solução de hidrólise juntamente com 5 gotas do cloreto de 
cálcio. Notamos que não a formação de espuma e a presença de cristais que são aas 
precipitações de cálcio. 
 
SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais 
materiais utilizados. 
 
Os lipídeos são uma biomolécula muito importante. Temos várias categorias como os 
ácidos graxos, e temos os triglicerídeos, os fósforos lipídeos, todos eles fazendo parte de 
alguma função do nosso corpo. São muito importantes e por isso precisamos conhecer 
mais dessa biomolécula. Ela tem uma característica bem peculiar onde ela tem uma 
hidrofobia, ela não é solúvel em água, conseguimos perceber bem visualmente quando 
há uma separação entre o óleo e a água. Nessa pratica de hoje vamos fazer a solubilidade 
de lipídeos. 
 
Materiais utilizados: 
 
• 5 Pipetas de vidro de 5ml; 
• 5 Tubos de ensaio; 
• Óleo de cozinha; 
• Ácido Clorídrico; 
• Hidróxido de Sódio 0,1N; 
• Álcool etílico; 
• Éter etílico; 
• Pera de borracha; 
• Água destilada. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de 
insolubilidade em soluções aquosas. 
 
 
 
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______/______/______a estrutura bioquímica dos lipídios, caracterizada por cadeias de hidrocarbonetos não 
polares, é a principal razão para sua insolubilidade em soluções aquosas. Isso tem 
implicações importantes em processos biológicos, como transporte de lipídios no corpo, 
formação de membranas celulares e armazenamento de energia. 
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. 
 
A técnica de solubilidade dos lipídios é fundamentada na natureza química dos lipídios, 
que são moléculas insolúveis em água devido à sua estrutura hidrofóbica. Essa técnica 
visa identificar a capacidade de lipídios se dissolverem em solventes específicos. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Notamos que ao misturarmos o óleo no tubo 1, onde colocamos água destilada, as 
substancias não a homogeneização. 
 
No tubo 2, colocamos ácido clorídrico 0,1N, não houve homogeneização. 
 
No tubo 3, colocamos hidróxido de sódio 0,1N, não houve homogeneização, mas formou-
se sabão. 
 
No tubo 4, colocamos etanol e houve um pouco de solubilidade. 
 
No tubo 5, colocamos éter etílico apresentou a melhor solubilidade. 
 
 
 
 
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Referências 
 
 
MUNDO EDUCAÇÃO. Amido. Disponível em: 
. Acesso em: 20 abr. 2024. 
 
BRASIL ESCOLA. Ácido Clorídrico. Disponível em: 
. Acesso em: 20 abr. 2024. 
 
INFOESCOLA. Amido. Disponível em: 
. Acesso em: 20 abr. 
2024. 
 
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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
 
RELATÓRIO 
01 e 02 
DATA: 
 
______/______/______ 
 
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