Relatório Prática_Bioquímica Humana

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RELATÓRIO DE PRÁTICA 
Renata Gonçalves dos Santos, 47610115 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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DATA: 
 
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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana 
 
DADOS DO(A) ALUNO(A): 
 
NOME: Renata Gonçalves dos Santos MATRÍCULA: 47610115 
CURSO: Fisioterapia POLO: UNIFAEL-SALVATERRA 
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Claudeir Dias S. Junior 
 
ORIENTAÇÕES GERAIS: 
• O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e 
concisa; 
• O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema; 
• Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado); 
• Tamanho: 12; 
Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm; 
• Espaçamento entre linhas: simples; 
• Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado). 
 
 
RELATÓRIO: 
 
ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Os materiais utilizados na experiência incluíram 6 tubos de ensaio, sendo 3 destinados à hidrólise 
química e 3 à hidrólise enzimática. Também foram utilizados 3 ml de amilase salivar, 3 ml de ácido 
clorídrico, 5 ml de água destilada e 30 ml de amido a 1%. Além disso, foram necessários 
equipamentos como proveta, béquer, pera de borracha, banho de gelo e banho-maria. 
O experimento foi dividido em duas técnicas: a hidrólise enzimática, que utilizou a amilase salivar, 
e a hidrólise química, que empregou uma solução de ácido clorídrico. Para iniciar a técnica, três 
tubos foram preparados para a atividade química com ácido, enquanto os outros três foram usados 
para a hidrólise enzimática com amilase salivar. Considerando que as proteínas podem se 
desnaturar dependendo do ambiente em que se encontram, foi feito uso do banho de gelo e do 
banho-maria para avaliar como essas variações de temperatura afetam as reações catalíticas. 
A professora começou preparando a solução para a hidrólise química ao adicionar 30 ml de amido 
a 1% em uma proveta. Em seguida, transferiu essa solução para um béquer e adicionou 3 ml de 
ácido clorídrico. Com o auxílio da pera de borracha, fez a sucção e incorporou essa mistura ao 
amido no béquer. Para a hidrólise enzimática, também foram utilizados 30 ml de amido e 3 ml da 
solução de amilase salivar. Essas soluções foram distribuídas nos tubos para realizar as duas 
atividades experimentais. 
Depois, os tubos foram submetidos a diferentes temperaturas em banho de gelo e banho-maria para 
observar as reações. A adição da solução de lugol permitiu verificar se houve quebra do amido. 
Além dos tubos, também foram utilizados 5 ml de água na hidrólise enzimática com amilase. Em 
cada tubo foi adicionada a solução correspondente: uma mistura com ácido clorídrico e amido para 
a hidrólise química e outra com amido e amilase salivar para a enzimática. 
 
 
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O primeiro passo foi colocar o tubo 1 (tanto da hidrólise química quanto da enzimática) no banho 
de gelo por um minuto. O tubo 2 foi mantido no banho-maria por cerca de 10 minutos antes de ser 
resfriado no banho de gelo. O tubo 3 passou por um período de 20 minutos no banho-maria antes 
também ser colocado no gelo. Enquanto os tubos 2 e 3 estavam submetidos ao calor, o tubo 1 que 
estava apenas no banho de gelo recebeu 5 gotas da solução de lugol a 2%, que contém iodo capaz 
de reagir com o amido formando uma coloração escura esverdeada ou azulada. 
Os resultados mostraram que nos tubos 1 (tanto da reação química quanto da enzimática), houve 
degradação do amido após o tratamento no banho de gelo. Por outro lado, nos tubos 2, que passaram 
por um tempo maior em banho-maria antes do resfriamento rápido, não foi observada degradação 
do amido. O mesmo ocorreu com os tubos 3. Esses resultados indicam claramente que a 
temperatura tem um papel significativo na atividade tanto das enzimas quanto das reações 
químicas. 
2. Responda as Perguntas: 
a) Qual a composição bioquímica do amido? 
 
A composição é a Amilose e a Amilopectina. A amilose é uma macromolécula constituída de 250 
a 300 resíduos de D-glicopiranose, ligadas por pontes glicosídicas alfa-1,4, que conferem à 
molécula uma estrutura helicoidal. Já a amilopectiana é menos hidrossolúvel que a amilose e 
compõe-se de aproximadamente 1400 resíduos de alfa-glicose, ligados por pontes glicosídicas alfa-
1,4, ocorrendo também ligações alfa-1,6. Ela constitui cerca de 80% dos polissacarídeos existentes 
no grão de amido. (UFRGS, 2022) 
 
 
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química 
do amido? 
 
O HCl, junto com aquecimento e resfriamento, tem como objetivo quebrar as ligações glicosídicas 
do amido, produzindo glicose. O aquecimento acelera a reação, e o resfriamento pode interrompê-
la. 
 
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose. 
 
A amilase inicia a hidrólise da amilose na boca, quebrando as ligações glicosídicas e formando 
oligossacarídeos e glicose (INFO ESTCOLA,2021) 
 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico. 
 
Nos tubos 1, que ficaram em banho de gelo, houve degradação do amido. Já nos tubos 2 e 3, que 
passaram por banho-maria antes do resfriamento, não houve degradação. Isso mostra que a 
temperatura influencia a atividade enzimática e química. 
 
REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E 
CETOSES) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Os materiais utilizados no experimento incluíram o reativo de Seliwanoff, ácido clorídrico, glicose, 
frutose, água como controle negativo, uma pera de borracha e três tubos de ensaio para as reações. 
 
 
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O procedimento começou com a adição de 1 ml de água no tubo 1, 1 ml de glicose no tubo 2 e 1 
ml de frutose no tubo 3. Em seguida, foram adicionados 1,5 ml de ácido clorídrico e 0,5 ml do 
reativo de Seliwanoff a cada tubo. Os tubos foram colocados em banho-maria a aproximadamente 
70 graus e monitorados até que ocorresse mudança de cor. 
Após cerca de 2 minutos, observou-se que o tubo com glicose permaneceu sem alteração, indicando 
que não houve formação de furfural e que não ocorreu reação com o resorcinol. Por outro lado, no 
tubo com frutose, uma mudança de cor foi detectada, confirmando a reação do resorcinol com o 
furfural. O tubo com água como controle negativo também não apresentou mudanças. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff? 
 
A técnica de Seliwanoff baseia-se no fato de que as cetoses desidratam mais rapidamente que as 
aldoses quando aquecidas, permitindo sua identificação. (UFPB, 2017) 
 
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada. 
 
O tubo com água destilada serve como controle negativo, assegurando que as mudanças observadas 
nos outros tubos sejam causadas pelos açúcares testados. 
 
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff? 
 
A fervura e o ácido clorídrico (HCl) são necessários no teste de Seliwanoff porque o HCl desidrata 
os carboidratos, e a fervura fornece a energia necessária. Isso resulta na formação de furfurais, que 
geram uma coloração vermelha intensa. (UFPB, 2017) 
 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses. 
 
Nos resultados, a glicose não apresentou alterações, indicando que não formou furfural e não reagiu 
com o resorcinol. Já a frutose mudou para vermelho, evidenciandoa reação com os furfurais. 
 
PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Para a realização do experimento, foram necessários alguns materiais: ácido tricloroacético a 20%, 
acetato de chumbo a 10%, ovoalbumina a 10%, dois tubos de ensaio, pipeta e uma pera de borracha. 
O procedimento se inicia com a adição da solução de ovoalbumina em um dos tubos de ensaio. Em 
seguida, no segundo tubo, adiciona-se o ácido tricloroacético. A seguir, utilizando uma pipeta, o 
acetato de chumbo é incorporado ao tubo que contém a ovoalbumina. É importante agitar 
suavemente a mistura para garantir que as soluções se misturem adequadamente. 
O resultado esperado dessa reação é a formação de um precipitado branco no tubo contendo o 
acetato de chumbo e a ovoalbumina. Essa mudança visual indica uma reação entre o acetato de 
chumbo e as moléculas da proteína, resultando na formação de um complexo insolúvel. Em 
contraste, um tubo controle preparado com apenas ovoalbumina e água não deverá apresentar 
precipitado, evidenciando que a formação do mesmo é específica para a interação com o acetato de 
chumbo. 
A interpretação dos resultados é essencial para entender a presença e comportamento das proteínas 
em solução. O precipitado observado no tubo experimental confirma a presença da ovoalbumina, 
enquanto a ausência desse precipitado no controle reforça a especificidade da reação química. Esse 
 
 
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experimento não só ilustra princípios básicos da química analítica como também enfatiza a 
importância das proteínas nos processos biológicos. 
 
Em conclusão, o estudo da reação entre o acetato de chumbo e a ovoalbumina não apenas 
proporciona uma demonstração prática da detecção de proteínas, mas também serve como um 
modelo didático para compreender reações químicas em bioquímica. Através deste experimento 
simples, alunos e interessados na área podem observar diretamente as interações entre substâncias 
químicas e aprender sobre as características fundamentais das proteínas. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados? 
 
A ovoalbumina precipita devido à desnaturação das proteínas, que altera sua estrutura 
tridimensional e forma agregados insolúveis, sendo essa propriedade utilizada para determinar a 
presença de proteínas em amostras. (UFPB, 2017) 
 
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação. 
 
A insolubilidade da ovoalbumina após a precipitação é causada pela desnaturação, que expõe 
grupos hidrofóbicos que interagem entre si, formando agregados insolúveis e resultando na 
separação da fase líquida. (UFPB, 2017) 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Os resultados mostram que a presença de acetato de chumbo e ácido tricloroacético provoca a 
desnaturação da ovoalbumina e a formação de um precipitado, permitindo a identificação 
qualitativa da proteína na amostra. 
 
PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Na aula prática, foram utilizados materiais como tubos de ensaio, pera de borracha, água destilada, 
pipeta de vidro, ovoalbumina a 10% e solução concentrada de sulfato de amônia. O experimento 
começou com a preparação de duas amostras de ovoalbumina, garantindo que ambas apresentassem 
a mesma concentração de 10%, sendo uma destinada ao teste e a outra como controle. 
Após a preparação, uma quantidade igual da solução de sulfato de amônia foi adicionada a ambas 
as amostras. A escolha da concentração do sulfato foi baseada na faixa desejada para precipitação 
fracionada. As amostras foram então agitadas para assegurar uma mistura homogênea e observadas 
quanto a mudanças em sua aparência. 
Os resultados esperados incluíam a formação de um precipitado na amostra com sulfato de amônia, 
cuja natureza e quantidade dependiam das concentrações utilizadas. Para validação dos resultados, 
um tubo de controle foi criado com apenas ovoalbumina, permitindo verificar se o precipitado era 
específico à ação do sulfato. 
A interpretação dos resultados indicou que a precipitação fracionada ocorreu devido à adição do 
sulfato de amônia, evidenciando que proteínas com diferentes solubilidades podem precipitar em 
concentrações variadas dessa solução. Esse experimento não apenas ilustra o comportamento das 
proteínas em solução, mas também destaca a importância das interações químicas na bioquímica. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
 
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a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? 
 
“Salting out” refere-se à diminuição da solubilidade de substâncias em solução salina, enquanto 
“salting in” pode aumentar a solubilidade. A camada de solvatação é a organização das moléculas 
de solvente ao redor do soluto, essencial para a dissolução. (UFPB, 2017) 
 
b) Qual o princípio bioquímico do experimento? 
 
O princípio é que a variação da força iônica na solução, devido à adição de sal, afeta a interação 
entre proteínas e água, levando à precipitação ou aumento da solubilidade, sendo útil na separação 
de proteínas 
 
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento. 
 
Os resultados mostram que concentrações mais altas de sulfato de amônia favorecem a precipitação 
da ovoalbumina, enquanto concentrações mais baixas podem aumentar sua solubilidade, 
dependendo de fatores como pH e temperatura. 
 
REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Para o experimento, foram utilizados os seguintes materiais: sacarose 1%, glicose 1%, reativo de 
Benedict, água, pera de borracha e três tubos de ensaio. O procedimento começou com a separação 
dos três tubos, um para cada substância: glicose, sacarose e água (controle). Em cada tubo, foram 
adicionados 5 ml do reativo de Benedict. No primeiro tubo, foi acrescentado 5 ml de água; no 
segundo, 5 ml de sacarose; e no terceiro, 5 ml de glicose. 
Como a reação não ocorre instantaneamente, utilizou-se um banho-maria a aproximadamente 70 
graus Celsius por 5 minutos para facilitar a reação. Após esse tempo, observou-se que no tubo com 
água (controle negativo) não houve mudança de cor. No tubo com sacarose, também não houve 
nenhuma reação, indicando que a sacarose não é um carboidrato redutor. Por outro lado, no tubo 
com glicose, foi notada uma alteração na cor para esverdeada, o que indica que houve uma redução 
dos íons presentes. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento. 
 
Os açúcares redutores podem reduzir íons de cobre (Cu²⁺) a Cu⁺, formando precipitado de óxido 
de cobre e resultando em mudança de cor, que indica a presença e concentração de açúcares 
redutores 
 
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”? 
 
Açúcares redutores são aqueles que possuem grupos funcionais aldeído ou cetona, permitindo-lhes 
atuar como agentes redutores em reações de oxidação-redução. (UNOESTE, 2021 p. 172) 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
 
 
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Os resultados mostram que a glicose, um açúcar redutor, causa mudança de cor no reagente de 
Benedict, enquanto a sacarose, não redutora, não apresenta essa reação, evidenciando a utilidade 
da técnica para identificação de açúcares. 
 
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica. 
 
A reação de Benedictpode ser utilizada em diagnósticos médicos para monitorar níveis de açúcares 
redutores em amostras biológicas, sendo importante no acompanhamento de condições como 
diabetes. 
 
REAÇÃO DE BIURETO 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Durante a aula, foram utilizados os seguintes materiais: reativo de biureto, ovoalbumina 10% (a 
proteína encontrada no ovo), uma pera de borracha, 1 ml de água destilada e dois tubos de ensaio. 
O experimento começou com a adição de 1 ml de água destilada em um dos tubos. Em seguida, o 
reativo de biureto foi adicionado a esse tubo, resultando em uma solução que serviu como controle. 
No segundo tubo, foi adicionada a ovoalbumina, seguida pela adição do reativo de biureto. 
Após misturar bem os conteúdos dos tubos, aguardou-se alguns instantes para observar as reações. 
Notou-se que no tubo com a ovoalbumina e o reativo de biureto houve uma mudança de cor, 
indicando a presença da proteína. Por outro lado, no tubo que continha apenas água destilada e o 
reativo, não houve qualquer alteração na coloração. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto. 
 
A reação de Biureto baseia-se na capacidade das proteínas de formar complexos de cobre em meio 
alcalino, permitindo a quantificação da proteína pela intensidade da coloração violeta. (MUNDO 
EDUCAÇÃO, 2017). 
 
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas? 
 
A ligação que ocorre entre o Biureto e as proteínas é a ligação peptídica, resultante da união dos 
grupos amino e carboxila dos aminoácidos. (MUNDO EDUCAÇÃO, 2017). 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
No experimento, o tubo com ovoalbumina e reativo de biureto apresentou mudança de cor, 
indicando a presença de proteína. Já no tubo com água destilada e reativo, não houve alteração, 
confirmando a ausência de proteínas. 
 
REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
O experimento teve como objetivo identificar a presença do amido usando a solução de lugol como 
indicador. Foram utilizados materiais como solução de amido a 1%, lugol a 2%, água destilada, 
dois tubos de ensaio e uma pera de borracha. 
 
 
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O procedimento começou com a adição de 1 ml de amido em um tubo e 1 ml de água destilada no 
outro, servindo esta última como controle negativo. Em seguida, foi adicionada a solução de lugol 
em ambos os tubos. 
Os resultados mostraram que o tubo com água ficou com uma coloração amarelada, indicando a 
ausência de amido, enquanto o tubo com amido apresentou uma coloração esverdeada, 
confirmando sua presença. Assim, o experimento demonstrou a eficácia do lugol na identificação 
do amido, evidenciando a importância das reações químicas na análise de substâncias. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos. 
 
O lugol forma complexos de inclusão com o amido, resultando em uma mudança de cor visível que 
confirma a presença de polissacarídeos nas amostras. ( COSTA, 2019) 
 
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
 
A técnica é utilizada em laboratório para identificar polissacarídeos em alimentos e bebidas, além 
de ser importante em pesquisas biológicas para entender a função dos carboidratos. ( COSTA 2019) 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
A mudança de cor para azul escura ou preta indica a presença de polissacarídeos, e a intensidade 
da coloração reflete a quantidade relativa de amido na amostra 
 
REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
O experimento de saponificação foi realizado com o objetivo de produzir sabão a partir da reação 
entre um álcali e triglicerídeos. Para isso, foram utilizados diversos materiais, incluindo hidróxido 
de sódio (NaOH) ou hidróxido de potássio (KOH), óleo ou gordura, água destilada, um recipiente 
resistente ao calor, e equipamentos de segurança como óculos e luvas. 
O primeiro passo foi preparar o recipiente resistente ao calor, onde o álcali foi pesado na quantidade 
adequada. Em seguida, a solução alcalina foi preparada, adicionando lentamente o hidróxido à água 
destilada em um recipiente separado, sempre respeitando a ordem para evitar reações perigosas. A 
mistura foi agitada até que o álcali estivesse completamente dissolvido. 
Com a solução de soda cáustica pronta, a quantidade necessária de óleo ou gordura foi pesada e 
colocada em uma tigela. A seguir, a solução alcalina foi adicionada ao óleo, iniciando assim o 
processo de saponificação. A mistura foi aquecida a uma temperatura moderada entre 40 e 70°C e 
agitada continuamente para garantir uma reação uniforme. 
Durante o aquecimento, foi verificado o ponto de trace, que indica que a saponificação estava 
completa. Este ponto é caracterizado por uma consistência semelhante à do pudim, permitindo que 
a mistura deixasse uma trilha visível ao ser levantada com uma colher. Após essa verificação, a 
mistura foi despejada em moldes para dar forma ao sabão. 
Por fim, o sabão foi deixado para curar por várias semanas. Esse processo é essencial para que o 
produto possa ser utilizado com segurança. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos. 
 
 
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Ácidos graxos são cadeias hidrocarbonadas com um grupo carboxila, enquanto triglicerídeos são 
formados por três ácidos graxos ligados a um glicerol, ambos essenciais para armazenamento de 
energia. (Castilho, 2024. Leite, 2017) 
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
 
 A técnica baseia-se na reatividade dos triglicerídeos em presença de uma base forte, resultando em 
sabões e glicerol, sendo amplamente aplicada na fabricação de produtos de limpeza. (FPB, 2019) 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Os resultados incluem a formação de sabão, alteração da consistência da mistura e liberação de 
glicerol. A textura e cor podem mudar durante a reação, e o pH geralmente é alcalino. 
 
SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais 
utilizados. 
 
Durante a aula prática de bioquímica, foram realizados testes para avaliar a solubilidade de várias 
substâncias, como óleo vegetal, manteiga e gema. Para isso, utilizamos tubos de ensaio, pipetas de 
vidro, estantes, um banho-maria e um bico de Bunsen. 
O primeiro passo consistiu na preparação das substâncias, onde pequenas quantidades foram 
pesadas e colocadas em tubos de ensaio. Em seguida, iniciamos o teste de solubilidade em água. 
Adicionamos uma porção de óleo vegetal a um tubo e misturamos com água, agitando 
vigorosamente para observar se formava uma emulsão ou se se misturava completamente. 
No segundo teste, repetimos o procedimento com álcool etílico em um novo tubo. A mistura foi 
agitada para verificar a solubilidade do óleo na presença do álcool. Por fim, realizamos um terceiro 
teste colocando uma substância em água e aquecendo-a em banho-maria. Observamos se a 
temperatura elevada favorecia a dissolução da substância. 
Esses procedimentos permitiram uma análise prática das propriedades solubilizantes das 
substâncias testadas, enriquecendo nossa compreensão sobre os conceitos fundamentais da 
bioquímica. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de 
insolubilidadeem soluções aquosas. 
 
Os lipídios possuem regiões polares e apolares, resultando em insolubilidade em água, já que a 
água é polar e não interage bem com as partes hidrofóbicas dos lipídios. (Mundo Educação, 2015) 
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. 
 
A técnica se baseia nas propriedades químicas dos lipídios, que são insolúveis em água devido a 
interações hidrofóbicas, sendo útil para identificar e estudar lipídios. (Fernandes, 2024) 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Os resultados confirmam que os lipídios são insolúveis em água, mas solúveis em solventes 
orgânicos, informação crucial para entender a digestão e absorção de lipídios em organismos vivos 
e na indústria alimentícia 
 
 
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Referencias: 
 
Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS). O amido. 2022. Disponível em: 
https://www.ufrgs.br/alimentus1/terradearroz/grao/gr_grao_amido_popup.htm#:~:text=O%20
amido%20%C3%A9%20um%20polissacar%C3%ADdeo,%C3%A0%20mol%C3%A9cula%
20uma%20estrutura%20helicoidal. Acesso em: 03 de setembro de 2024 
INFOESCOLA. Amido. 2021. Disponível em: 
https://www.infoescola.com/bioquimica/amido/. Acesso em: 03 de setembro de 2024 
Universidade Federal da Paraíba. Teste de Seliwanoff. Disponível em: 
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/teste-de-seliwanoff. Acesso em: 04 de setembro de 
2024. 
Universidade Federal da Paraíba (UFPB). Precipitação por sais de metais pesados e por 
ácidos fortes. 2017. Disponível em: http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-
por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes. Acesso em: 04 de setembro de 2024 
UNOESTE. Determinação de açúcares redutores, açúcares solúveis totais e sacarose em 
vinhaças da cana-de-açúcar. 2021. Disponível em: 
https://downloads.editoracientifica.org/articles/210303948.pdf. Acesso em: 06 de setembro de 
2024. 
Mundo Educação. Teste de biureto em sala de aula. 2017. Disponível em: 
https://educador.brasilescola.uol.com.br/estrategias-ensino/teste-biureto-sala-aula.htm. Acesso 
em: 08 de setembro de 2024 
Castilho Rubens. Ácidos graxos: o que são, suas características e funções. 2024. Disponível 
em: https://www.todamateria.com.br/acidos-graxos/. Acesso em: 08 de setembro de 2024 
Leite Fernando. Triglicerídeos. 2017. Disponível em: 
https://www.ahfcolesterol.org/prevencao-e-tratamento/triacilglicerol/. Acesso em: 08 de 
setembro de 2024. 
A da Costa Loureiro. Estudo em alimentos cotidianos: Pesquisa de polissacarídeos através 
da reação com iodo. 2019. Disponível em: 
https://www.ufrgs.br/alimentus1/terradearroz/grao/gr_grao_amido_popup.htm#:~:text=O%20amido%20%C3%A9%20um%20polissacar%C3%ADdeo,%C3%A0%20mol%C3%A9cula%20uma%20estrutura%20helicoidal
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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
 
RELATÓRIO 
01 e 02 
DATA: 
 
______/______/______ 
 
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