QUESTÕES PARA ESTUDO - ANTIBIOGRAMA

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<p>QUESTÕES PARA ESTUDO - AULA 20 DE SETEMBRO</p><p>1- Quais são os principais tipos de resistência bacteriana?</p><p>Natural: Bactéria está fora do espectro de ação da droga. Ex: Ausência do sítio de ação.</p><p>Adquirida: Por mecanismos genéticos diversos, surgem numa população bacteriana</p><p>amostras que não sofrem mais a ação da droga, que é eficaz contra o resto da população.</p><p>Resistência Cromossômica: As bactérias podem adquirir resistência por meio de mutações</p><p>cromossômicas, que podem originar genes de resistência. Uma única droga, é possível a</p><p>transferência dessa resistência.</p><p>Resistência Extra-Cromossômica: quando há transferência de plasmídios, partículas de</p><p>resistência que são moléculas de DNA. Os plasmídios são encontrados em quase todas as</p><p>bactérias e são capazes de se reproduzir independentemente do DNA cromossômico.</p><p>2- Como ocorre a variação genética que leva à resistência bacteriana?</p><p>Variação permanente resultante da mutação:</p><p>1. população de uma bactéria em processo de multiplicação → tempo → 2. processo de</p><p>crescimento e divisão produzem naturalmente células mutantes → 3. população continua</p><p>multiplicação, e originando ocasionalmente, mais células mutantes → Pressão Seletiva</p><p>(Células são expostas a um composto antimicrobiano) → 4. células são mortas ou</p><p>impedidas de multiplicação pelo antimicrobiano com exceção dos mutantes resistentes ao</p><p>antimicrobiano específico.</p><p>Variação permanente resultante de Recombinação Genética:</p><p>1. duas populações bacterianas A e B crescem em um mesmo ambiente. A espécie B é</p><p>resistente a droga X → 2. troca de DNA (elementos genéticos móveis) ocorre entre células</p><p>em baixa frequência → 3. células da espécie A recebem o gene de resistência a droga X,</p><p>presente no elemento genético móvel da espécie B → Pressão Seletiva (bactérias são</p><p>expostas à droga X) → 4. na presença da droga X, as células da espécie A que receberam</p><p>gene da resistência da espécie B são capazes de multiplicar-se enquanto que as células</p><p>originalmente sensíveis não multiplicam-se.</p><p>3- Quais são os mecanismos de ação das drogas antibacterianas?</p><p>Inibicão da síntese da parede celular:</p><p>- Betalactâmicos: amoxicilina, amoxicilina, meticilina, cefalosporina</p><p>- Antibiótico polipeptídico: bacitracina</p><p>- Antibióticos glicopeptídicos: vancomicina</p><p>Inibição da síntese proteica:</p><p>- tetraciclina</p><p>- macrolídeo</p><p>- aminoglicosídeo</p><p>Inibição da síntese de ácidos nucleicos:</p><p>- quinolona</p><p>- rifampicina</p><p>- metronidazol</p><p>4- O que diferencia uma resistência bacteriana natural de uma adquirida?</p><p>Resistência natural e adquirida diferem porque enquanto a natural se dá porque a bactéria</p><p>está fora do espectro de ação da droga (ex: por não ter sítio de ação para esta), logo todos</p><p>os indivíduos dessa espécie são resistentes ao antimicrobiano; a adquirida se dá por</p><p>mutações e recombinação genética que acontece nas espécies fazendo com que surjam</p><p>numa população bacteriana indivíduos que não sofrem mais a ação da droga, enquanto os</p><p>outros ainda sofrem.</p><p>5- Quais são os métodos utilizados para o teste de sensibilidade aos</p><p>antimicrobianos?</p><p>• Kirby-Bauer: Difusão com disco (disco-difusão)</p><p>• Diluição em caldo (macro ou micro)</p><p>• Etest®</p><p>• Automação</p><p>6- Como funciona o método de difusão em disco (Kirby-Bauer)?</p><p>Permite crescimento satisfatório da maioria dos germes não fastidiosos (não exigem</p><p>condições especiais para cultivo).</p><p>São utilizadas placas de Petri (vidro ou plástico) com camada do meio de 6 mm de</p><p>espessura.</p><p>Preparo: Transferir para um tubo com BHI (Brain Heart Infusion) 5 colônias da</p><p>bactéria em estudo; incubar a 37oC; obter densidade equivalente ao padrão de Mc Farland</p><p>0,5.</p><p>Semeadura: Swab estéril; retirar excesso de caldo e semear na superfície do meio</p><p>uniformemente; secar em temperatura ambiente por 3 a 5 minutos.</p><p>Aplicação de discos: pressionar levemente contra superfície do meio e pelo menos</p><p>2 cm da borda da placa e a pelo menos 3 cm um do outro (evitar halos de inibição em</p><p>fusão); usar apenas um disco de cada grupo de drogas (concentração única).</p><p>Incubação das Placas: Em temperatura (37°C) e atmosfera adequada para o</p><p>crescimento da bactéria (aerobiose, anaerobiose, 10% de CO2)</p><p>Leitura das Placas: Após 18-24 horas de incubação; usar compasso ou régua para</p><p>determinar o diâmetro do halo de inibição; colônias dentro do halo sugerem mutantes</p><p>resistentes ou contaminantes.</p><p>Interpretação: Resistente, moderadamente resistente ou sensível, de acordo com o</p><p>halo de inibição;</p><p>7- O que é a Concentração Inibitória Mínima (CIM) e como é determinada?</p><p>Se refere à menor concentração de um antimicrobiano (como um antibiótico) capaz de inibir</p><p>completamente o crescimento de uma bactéria específica, ou seja, é a dose mínima de um</p><p>medicamento que impede que uma bactéria se multiplique.</p><p>A determinação da CIM envolve um processo laboratorial conhecido como antibiograma,</p><p>onde há:</p><p>- isolamento da bactéria</p><p>- preparação de suspensão bacteriana</p><p>- preparo de diferentes concentrações</p><p>do antibiótico</p><p>- inoculação da bactéria</p><p>- incubação</p><p>- leitura</p><p>8- O que são beta-lactamases de espectro ampliado (ESBL) e como elas são</p><p>detectadas?</p><p>São enzimas produzidas por algumas bactérias, como Escherichia coli e Klebsiella</p><p>pneumoniae, que conferem resistência a um amplo espectro de antibióticos</p><p>beta-lactâmicos. Esses antibióticos incluem as penicilinas, cefalosporinas de primeira,</p><p>segunda e terceira geração, e monobactâmicos.</p><p>Detecção:</p><p>- Teste de disco-difusão (antibiograma): Neste método, discos de papel impregnados com</p><p>diferentes antibióticos são colocados em uma placa de Petri com ágar semeada com a</p><p>bactéria. A presença de um halo de inibição menor ao redor dos discos de cefalosporinas</p><p>de terceira geração, em comparação com os discos combinados com inibidores de</p><p>beta-lactamases (como o ácido clavulânico), sugere a produção de ESBL.</p><p>9- Quais são os microrganismos de importância clínica que apresentam resistência</p><p>significativa a antibióticos?</p><p>Resistências bacterianas de importância clínica</p><p>• Klebsiella pneumoniae resistentes à cefoxitina e ceftazidima (cefalosporinas)</p><p>• Enterococcus faecalis e Enterococcus faecium resistentes à vancomicina;</p><p>• Staphylococcus – resistente a -lactâmicos e vancomicina;</p><p>• Streptococcus -hemolíticos – resistente à penicilina;</p><p>• Streptococcus viridans - vancomicina;</p><p>• Neisseria gonorrhoeae - resistente à ceftriaxona;</p><p>• Neisseria meningitidis - resistente à penicilina;</p><p>• Enterobactérias - resistentes ao imipenem.</p><p>10- Quais antibióticos inibem a síntese de proteínas bacterianas?</p><p>- Tetraciclina : Impede o alongamento do polipeptídeo no ribossoma 30S</p><p>- Macrolídeo: Impede o alongamento do polipeptídeo no ribossoma 50S</p><p>● Eritromicina, azitromicina, claritromicina, etc.</p><p>- Aminoglicosídeo: Liga-se a proteínas ribossomais</p><p>● Estreptomicina</p>