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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
	
RELATÓRIO 02
	
	
	DATA:
12 / 12 / 2023
RELATÓRIO DE PRÁTICA 01
Ilza Carla Macêdo
01496370
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Parasitologia Clínica 
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME: ILZA CARLA MACÊDO
	MATRÍCULA: 01496370
	CURSO: BIOMEDICINA
	POLO: UNINASSAU - CARPINA
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): GUSTAVO RAMOS SALLES FERREIRA
PROFESSOR(A) DA DISCIPLINA: HEYTOR VICTOR PEREIRA DA COSTA NECO
PROFESSOR(A) TUTOR(A): THALITA MANOELA SOUSA DA CUNHA
		TEMA DE AULA: Rugai e Willis 
RELATÓRIO:
1. Descrever os principais aspectos da(s) técnica(s) utilizada(s) para ovos leves, abordando as principais diferenças.
O diagnóstico de parasitos intestinais é realizado por exame parasitológico de fezes, através das formas parasitárias eliminadas nas fezes. Onde na microscopia visualiza se ovos, larvas de helmintos, cistos, trofozoítos ou oocitos de protozoários.
O método Rugai se fundamenta no termohidrotropismo positivo de larvas de nematóides, como as larvas de S. stercoralis e de ancilostomídeos. A temperatura da água deve ser entre 40 e 45°C. É uma modificação do método de Baermann, método simples e de fácil execução. Sua eficiência é devido ao uso de um grande volume de material fecal, colocado sobre gazes, acima de um recipiente com água. Pelas propriedades descritas as larvas migram pela gaze e assentam no fundo da taça. 
Suas vantagens é a simplicidade e a rápida execução e a desvantagem apresenta a necessidade de fezes frescas e apresenta alta contaminação do microscópio.
O método Willis se baseia na flutuação simples que dissolve pequenas amostras de fezes em uma solução de sódio ou açúcar. Apresenta duas características a serem analisadas nos achados:
· Densidade: corpos menos densos flutuam sobre a solução salina;
· Flutuação espontânea e diferencial de densidade: ovos de helmintos de peso baixo especifico, principalmente nematoides, como ancilostomideos e Trichuris trichuria.
O método de Willis é pouco utilizado por se restringir a pesquisa de ovos leves, que podem ser detectados por outros métodos (método Faust), mas não o método de Rugai.
As diferenças podem ser entendidas como:
· Método de Willis: flutuação em saturação de sal ou açúcar dissolvida pequenas amostras de fezes na detecção de ovos leves de helmintos e oocistos de protozoários; 
· Método de Faust: princípio da centrifugação – flutuação, identifica a presença de ovos leves, cistos e oocitos.
· Método Rugai: não é usado para identificar ovos leves, feito por sedimentação, pesquisa larvas.
1. Citar os principais parasitas detectados por essas técnicas.
· Método Rugai: usado para isolar larvas das fezes. É fundamentada no principio do termohidrotrofismo positivo das larvas dos nematódeos (Strongyloide stercorales), como ancilostomídeos (Necator americanos e Ancilostoma duodenale);
· Método de Willis: indicado na pesquisa de ovos de helmintos, cistos de protozoários e ovos leves, como ancilostomídeos e de Trichostrongylus orientalis. De helmintos gastrointestinais;
· Método de Faust: pesquisa de cistos e oocitos de protozoários e de ovos leves.
1. 
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
CARVALHO, S. M. S. et al. Adaptação do método de Rugai e colaboradores para análise de parasitas do solo. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 38, n. 3, p. 270–271, maio 2005. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0037-86822005000300015. Acesso em 12 de dezembro de 2023.
ALCÂNTARA, D. S. et al. Estudo coproparasitológico da espécie Cebus libidinosus (macaco-prego). Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, v. 68, n. 6, p. 1609–1612, nov. 2016. Disponível em: https://doi.org/10.1590/1678-4162-9102. Acesso em 12 de dezembro de 2023.
DE CARLI, G. A. Parasitologia clínica: seleção de métodos e técnicas de laboratório para o diagnóstico das parasitoses humanas. 2ª ed. São Paulo: Aheneu, 2007. 
GOLDMAN, L & BENNETT, J.C. Cecil Tratado de Medicina, 21ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2001. 
PARASITOLÓGICO DE FEZES. LABORANÁLISE LABORATÓRIO. Disponível em: http://www.laboranalise.com.br/parasitologico-de-fezes/ 
	
	RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
	
RELATÓRIO 01
	
	
	DATA:
12 / 12 / 2023
RELATÓRIO DE PRÁTICA 02
Ilza Carla Macêdo
01496370
	
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Parasitologia Clínica 
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME: ILZA CARLA MACÊDO
	MATRÍCULA: 01496370
	CURSO: BIOMEDICINA
	POLO: UNINASSAU - CARPINA
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): MSc. RENATO SILVA
PROFESSOR(A) DA DISCIPLINA: HEYTOR VICTOR PEREIRA DA COSTA NECO
PROFESSOR(A) TUTOR(A): THALITA MANOELA SOUSA DA CUNHA
		TEMA DE AULA: Hoffman, Kato-Katz e Faust e col
RELATÓRIO:
1. Descrever os principais aspectos das técnicas utilizadas para ovos pesados, abordando as principais diferenças
As técnicas de concentração ou enriquecimento são procedimentos de rotina, para pesquisa de parasitos e o diagnóstico de um pequeno número de organismo omitidos em exames direto e fresco. São indicadas para separar os cistos, oocitos de protozoários e ovos pesados de helmintos considerando as diferenças de densidade.
O método de Hoffman, Pons e Janer, é um princípio por força gravitacional, não altera a viabilidade dos ovos. É uma técnica qualitativa, com baixa sensibilidade, baixo custo e com fácil execução. Com coloração de lugol, é possível a visualização de cistos de protozoários e larvas de helmintos. Suas desvantagens é a necessidade de um tempo maior para a sua execução, leitura e acumula detritos atrapalhando a observação e identificação dos parasitos.
O método de Kato-Katz é quantitativo e qualitativo, avalia pequenas porções de fezes, combinada em um cartão retangular de papelão com um orifício central e o esfregaço espesso de fezes. O material previamente tratado por 24 horas em solução glicerinada com água destilada e verde de malaquita ou azul de metileno é espalhado sobre a lâmina de vidro coberta com uma lamínula de celafone.
Após a evaporação da água, a glicerina clarifica e permite a visualização dos parasitos no microscópio. Sua vantagem é o uso significativo da amostra, sem outros métodos de concentração, de simples execução, com possibilidade de armazenamento das lâminas. A desvantagem está na consistência das fezes. Onde uma amostra de fezes seca pode apresentar uma contagem maior que uma amostra úmida, resultando em um resultado impreciso. 
A técnica de Faust e col. Foi modificada da técnica de Willis, com a substituição da solução de saturada de cloreto de sódio pelo sulfato de sódio, preparada na densidade de 1,18g/ml para fezes frescas. Tal mudança permite mais eficaz no sentido de não modificar os cistos e ovos em um período de uma hora ou mais. É uma técnica simples e eficiente para evidenciar cistos, ovos ou larvas. Baseia se na diferença de densidade entre elementos parasitários e a solução de sulfato de zinco, fornecendo pouco detritos.
2. Citar os principais parasitas que podem ser detectados por essas técnicas.
O método de Hoffman, Pons e Janer tem por objetivo diagnosticar parasitos intestinais pela concentração das formas parasitárias, possui um amplo espectro e possibilita a melhor visualização dos mesmos e suas formas. Detecta ovos pesados de cestódeos (Taenia sp.) e trematódeos (Schistosoma spp.), observa ovos leves de Trichuris trichiura, Ancylostoma duodenale e até Giárdia spp.
A técnica de Kato-Katz é um método quali-quantitativo, diagnosticando helmintos. Como Schistosoma mansoni, Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura e ancilostomatídeos.
O método de Faust e col.: detecta ovos leves de helmintos ou cistos e oocistos nas fezes, principalmente protozoários como Giárdia.
3. Existe a possibilidade de realizar exame quantitativo? Se sim, qual técnica poderia ser utilizada e como ela é realizada?
Sim, a técnica é a de Kato-Katz, método quali-quantitativo.
O método avalia uma pequena porção das fezes em lâmina coberta com lamínula (de celafone previamentetratada por 24 horas por solução com água destilada glicerina e verde de malaquita ou azul de metileno). Para a análise as fezes devem ser coletadas a fresco, em coletor universal e processada por 24horas. Recomenda-se fazer no mínimo 3 lâminas por paciente. E posteriormente ser examinado em microscópio e feita contagem dos ovos.
Há uma fórmula elaborada que facilita a estimativa do número de ovos. Para tanto multiplica-se o número de ovos presentes num grama de fezes pelo fator 24. Resultando no número total de ovos por gramas de fezes (OPG). 
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
CARVALHO, G. L. X. DE. et al. A comparative study of the TF-Test®, Kato-Katz, Hoffman-Pons-Janer, Willis and Baermann-Moraes coprologic methods for the detection of human parasitosis. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, v. 107, n. 1, p. 80–84, fev. 2012. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0074-02762012000100011. Acesso em 12 de dezembro de 2023.
MOLINA, J. G. A técnica de Kato para o diagnóstico coprológico de infecções parasitárias. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 5, n. 1, p. 17–20, jan. 1971. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0037-86821971000100002. Acesso em 12 de dezembro de 2023.
ALARCÓN, R. S. R. et al. Uma avaliação sobre a eficácia do método CSF no diagnóstico de helmintíases intestinais. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 40, n. 3, p. 359–360, maio 2007. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0037-86822007000300025. Acesso em 12 de dezembro de 2023.
GONÇALVES GS, et al. Estudo comparativo de técnicas parasitológicas de sedimentação espontânea: Kit comercial Coproplus®10 e método de Hoffman, Pons e Janer – HPJ. Revista Iniciação Científica. 2016;16(4): 124 -129. 
FERREIRA MU. Parasitologia Contemporânea. 1. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan,2012; 236p.
MENDES, C. R. et al. Estudo comparativo de técnicas parasitológicas: Kato-Katz e coprotest®. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 38, n. 2, p. 178–180, mar. 2005. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0037-86822005000200010. Acesso em 12 de dezembro de 2023.