RELATORIO MICRO I (1)

Prévia do material em texto

UNIVERSIDADE FEDERAL FLUMINENSE 
 MICROBIOLOGIA I 
ALUNA: TAÍSE SILVA DO NASCIMENTO 
 
 RELATÓRIOS DE AULAS PRÁTICAS 
 
RELATÓRIO AULA PRÁTICA 1: OBSERVAÇÃO DE MICROORGANISMOS NO MICROSCÓPIO. 
OBJETIVOS 
Observar e identificar microorganismos eucariontes e procariontes para diferenciar estruturas e diferenças de 
cada um. 
MATERIAIS UTILIZADOS 
 Lâminas e microscópio 
DESCRIÇÃO DA PRÁTICA 
Foram observados diferentes estruturas de organismos eucariontes e procariontes como a seguir: 
Microorganismos eucariontes podem possuir: Hifas contínuas e septadas, micro conídeos, corpos de 
frutificação, podendo ser pluricelulares ou unicelulares. (Ex: Fungos). 
Microorganismos procariontes podem ser: Gram negativos ou Gram positivos, Cocos, bacilos, espirilada, 
vribrião. 
RESULTADOS ESPERADOS 
 Saber diferenciar fungos de bactérias pela suas estruturas. 
REGISTRO E IMAGENS 
 
 
 
 
 
 
 
BIBLIOGRAFIA: TORTORA, G.J.; FUNKE, B.R.; CASE, C.L. MICROBIOLOGIA, 12ª Ed. Artmed, 2017. 
 
RELATÓRIO AULA PRÁTICA 2: PREPARO DE MEIO DE CULTURA 
OBJETIVOS 
Preparar o meio de cultura, ou seja, deixar o ambiente nutritivo e próprio para que os microrganismos 
( bactérias e fungos ) possam se desenvolver/multiplicar. 
MATERIAIS UTILIZADOS 
Frasco de meio de cultura, água destilada, balança, placa de petri, frasco de vidro apropriado, luvas, papel 
laminado, proveta e espátula. 
DESCRIÇÃO DA PRÁTICA 
 Ler o rótulo e observar as proporções de acordo com o fabricante, calcular as proporções e adicionar água 
destilada (a água precisa está em temperatura e ph corretos), pesar, dissolver, esterilizar ( 1° controle de 
qualidade ), fertilidade ( 2° controle de qualidade ) 
RESULTADOS ESPERADOS 
Sucesso na realização do preparo, o meio de cutura ficou propício para os microorganismos se desenvolverem. 
REGISTRO E IMAGENS 
 
 
 
 
 
 
BIBLIOGRAFIA 
MARIANGELA, CR., et al. Microbiologia Prática – Roteiro e Manual – Bactérias e Fungos. Ed. Atheneu, 
2011. 
 
 
 
 
RELATÓRIO AULA PRÁTICA 3: PROMOÇÃO DO CRESCIMENTO MICROBIANO/SEMEADURA POR 
ESTRIAS 
OBJETIVOS 
Promover crescimento de bactérias, por meio de estriação, a partir do meio de cultura na placa de Petri 
MATERIAIS UTILIZADOS 
Meio de cultura preparado, placa de Petri, alça inoculadora, bico de bunsen 
DESCRIÇÃO DA PRÁTICA 
Preparar o material dentro da alça de segurança, flambar a alça inoculadora (não descartável), mergulhar a 
ponta da alça inoculadora dentro do meio que foi cultivado no tudo de ensaio, pegar a placa de Petri (dentro 
da área de segurança), abrir e estriar de 10 a 15 vezes continuamente de ponta a ponta no interior da placa, 
fechar a placa e flambar a alça caso não seja descartável. 
RESULTADOS ESPERADOS: 
Após o cultivo ter sido armazenado em local adequado pelo monitor da disciplina , foi possível observa o 
crescimento e isolamento de colonias bacterianas. 
REGISTROS E IMAGENS 
 
 
 
 
 
 
 
BIBLIOGRAFIA: MARIANGELA, CR., et al. Microbiologia Prática – Roteiro e Manual – Bactérias e 
Fungos. Ed. Atheneu, 2011. 
 
 
 
 
 
 
RELATÓRIO AULA PRÁTICA 4: PREPARO DAS LÂMINAS PARA OBSERVAÇÃO E VISUALIZAÇÃO 
NO MICROSCÓPIO/ COLORAÇÃO DE GRAM 
OBJETIVOS: 
Preparar a lâmina para coloração de gram e após observação no microscópio diferenciando se bactéria gram 
positiva ou gram negativa. 
MATERIAIS UTILIZADOS 
Placa de Petri já preparada com cultivo, alça inoculadora, pipeta de pasteur, lâmina, bico de bunsen, suporte 
para coloração, água destilada, cristal violeta, lugol, descolorante e fucsina básica e óleo de imersão. 
DESCRIÇÃO DA PRÁTICA 
Pegar a placa de Petri, captar os microorganismos já cultivados com a alça inoculadora descartável, fazer o 
esfregaço captado na lâmina, fixar a lâmina no bico de bunsen (passando 3x). Apoiar a lâmina do suporte de 
coloração, aplicar o cristal violeta (aguardar 1 minuto) e lavar com água destilada, aplicar o lugol (aguardar 1 
minuto) escorrer, aplicar descolorante (aguardar 30 segundos) e aplicar a fucsina básica e lavar com água 
destilada. Deixar a lâmina secar. Colocar no microscópio, colocar óleo de imersão (caso queira visualizar no 
aumento de 100x) e observar no microscópio. 
RESULTADOS ESPERADOS: 
A lâmina obteve sucesso em todas as suas etapas e conseguiu-se observar a Bactéria Cocos Gram Negativa. 
Gram Negativa de cor rosa e Gram Positiva de cor roxa. 
REGISTROS E IMAGENS 
 
 
 
 
 
 
BIBLIOGRAFIA:TORTORA, G.J.; FUNKE, B.R.; CASE, L.C. Microbiologia. Artmed, São Paulo, 12 ed. 
2017. 
 
 
 
 
RELATÓRIO AULA PRÁTICA 5: TESTES BIOQUÍMICOS PARA CARACTERIZAÇÃO METABÓLICA 
OBJETIVO 
Através dos testes bioquímicos determinar as características metabólicas das bactérias para fins de 
identificação observando as reações químicas que elas realizam em relação a diferentes compostos. 
MATERIAIS UTILIZADOS 
Tubo de ensaio com meio de cultura preparado, alça inoculadora, tiras para reação de oxidase, tubos de ensaio, 
caldo de ureia, caldo de glicose, agar citrato e catalase. 
OBJETIVOS 
Identificar e caracterizar organismos, especialmente bactérias, com base em suas atividades metabólicas. Os 
testes vão avaliar a capacidade do organismo em utilizar diferentes substratos, produzir certas enzimas, ou 
crescer em condições específicas, fornecendo informações cruciais para sua identificação e diferenciação. 
 
DESCRIÇÃO 
1° Teste de Fermentação da Lactose foi utilizado, com caldo lactose (geralmente vermelho de fenol), para 
avaliar se a bactéria fermenta lactose produzindo ácido e/ou gás láctico. 
Interpretação: 
Cor amarelo: fermentação da lactose (produziu ácido) 
Bolhas no tubo Durham: Produção de gás láctico 
Cor vermelha: Sem mudança, bactéria não fermentadora. 
2° Teste: Oxidase(fita), utilizado para identificar bactérias que produzem a enzima citocromo oxidase. 
Interpretação: 
Azul/roxo escuro em ate 10 segundos: positivo. 
Sem coloração ou após 30 segundos: negativo. 
3° Teste: Catalase ( teste das bolhas ) utlizado para verificar a presença da enzima catalase, que quebra o 
peróxido de hidrogênio (H²O²). Colocando uma gota de H²O² na lâmina, adicinando uma pequena porção da 
colônia com alça estéril. 
4° Teste: UVP utilizado para avaliar vias fermentativas ( ácido misto ou butilenoglicol ) com caldo MR-VP. 
Interpretação: 
Adicionar 5 gotas de Vermelho de Metila: 
Vermelho intenso: positivo (ácido misto ) 
Amarelo/palha: negativo 
Teste VP: Adicionat 15 gotas de alfa-naftol e 5 gotas de KOH. Agitar e deixar repousar de 15-30 min. 
Anel ou coloração rosa/vermelha: VP positivo. 
Sem mudança: VP negativo. 
5° Teste – Citrato de Simmons foi utilizado para identificar bactérias capazes de usar citrato como única fonte 
de carbono. 
Interpretação: 
Azul: Positivo ( uso do citrato, libereção de álcali ) 
Verde: Negativo ( sem crescimento ) 
Verde claro: ( resultado duvidoso , pode indicar inicio de reação ). 
6° Teste: Urase ( teste da ureia ) foi utilizado para detectar produção da enzima urease 
Interpretação: 
Rosa Fluorecente/fúcsia: Positivo ( liberação de âmonia, ph aumentado ) 
Laranja pu sem mudança: Negativo 
 
REGISTRO DE IMAGENS 
 
 
 
 
 
 
 
 
REFERÊNCIAS: TORTORA, G.J.; FUNKE, B.R.; CASE, C.L. MICROBIOLOGIA, 12ª Ed. Artmed, 2017. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
RELATÓRIO AULA PRÁTICA 6: CULTIVO DE FUNGOS PARA CARACTERIZAÇÃO 
MORFOLÓGICA/ TÉCNICA DA FITA ADESIVA 
OBJETIVO 
Cultivar fungos em condições controladas (em câmara úmida) para observar e caracterizar suas estruturas 
morfologicamente através da técnica da fita adesiva. 
MATERIAIS UTILIZADOS 
Câmara úmida feita em casa, arroz, feijão, ração e macarrão, fita adesiva, azul de algodão, lâmina, bico de 
bunsen pra zona de segurança. 
DESCRIÇÃO DA PRÁTICA 
Elaboração da câmara úmida envolvendo um pote, papel toalha úmida tampa e elementos orgânicos. Após o 
crescimento dos fungos, colocar uma gota de azul de algodão na lâmina, aplicar a técnica da fitaadesiva para 
extrair o fungo e fixar na lâmina em cima da gota de azul de algodão. Fungo pronto para ser vizualizado no 
microscópio. 
RESULTADOS ESPERADOS 
Lâmina preparada com sucesso, foram identificados as estruturas do fugo cultivado como, micro conídeos, 
hifas septadas e corpos de frutificação. 
REGISTROS E IMAGENS 
 
 
 
 
 
BIBLIOGRAFIA: TORTORA, G.J.; FUNKE, B.R.; CASE, L.C. Microbiologia. Artmed, São Paulo, 
12 ed. 2017.