MICROCULTIVO DE BOLORES (ASPERGILLUS SP ) - RELATÓRIO DE PRÁTICA VIRTUAL

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CENTRO UNIVERSITÁRIO LEONARDO DA VINCI 
NÚCLEO DE EDUCAÇÃO A DISTÂNCIA - NEAD 
RELATÓRIO DE PRÁTICA VIRTUAL 
 
IDENTIFICAÇÃO 
1. Acadêmico: BÁRBARA HELENA BARBOSA GOMES DA SILVA 
2. Matrícula: 5436124 
3. Curso: FARMÁCIA 4. Turma: FLC89996BFR 
5. Disciplina: MICROBIOLOGIA (19958) 
6. Tutor(a) Externo(a): LARISSA ALESSANDRA DA CUNHA HERREIRA 
 
DADOS DA PRÁTICA 
1. Título: MICROCULTIVO DE BOLORES (ASPERGILLUS SP.) 
2. Semestre: 2024/2 
3. Data: 13/08/2024 
 
INTRODUÇÃO 
A técnica do microcultivo de bolores preserva a estrutura dos esporos sobre as hifas 
e mantém íntegras as estruturas formadoras de esporos, o que facilita a visualização. 
“A Micologia compreende um vasto campo de estudo, envolvendo microrganismos 
conhecidos por fungos, leveduras e actinomicetos, embora estes últimos estejam hoje 
classificados entre as bactérias. O estudo interessa a vários setores científicos e 
industriais”. (OLIVEIRA, 2014. p. 21). 
 
OBJETIVOS 
 Identificar um fungo filamentoso; 
 Identificar estruturas fúngicas vegetativas e de esporulação; 
 Aprender e reportar o resultado visualizado. 
 
MATERIAIS 
 Microscópio; 
 Placas de Petri; 
 Bisturi; 
 Lâminas; 
 Alça descartável; 
 Gaze; 
 Água destilada; 
 KOH; 
 Lactofenol. 
 
METODOLOGIA 
1. SEGURANÇA DO EXPERIMENTO 
Foram colocados os EPIs que estavam no armário. 
2. PREPARANDO O FLUXO LAMINAR 
 
 
 
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Ligou-se a ventilação do fluxo laminar. Foi acendido a luz e aberto a janela do 
fluxo. 
3. PREPARANDO A AMOSTRA 
Foi extraído uma secção do meio de cultura, do tamanho adequado. Em 
seguida, colocou-se o meio cortado em cima da lâmina que está na placa de 
Petri. 
4. INOCULANDO O FUNGO 
Foi retirado uma pequena porção da cultura do fungo filamentoso e 
depositado nas quatro extremidades do meio de cultura com o auxilio da alça 
descartável. Colocou-se a lamínula em cima da área ocupada pelo meio de 
cultura. Foi umedecido a gaze com água destilada e levada para o interior da 
placa de Petri, formando uma câmara úmida. Em seguida, vedou-se a placa de 
Petri e incubou por sete dias. 
5. OBSERVANDO NO MICROSCÓPIO 
Retirou-se a vedação da Placa de Petri, após passado o período de uma 
semana. Foi escolhida uma das duas soluções disponíveis, e pingou-se uma 
gota na lâmina e colocado uma lamínula em cima dessa lâmina. Foi levado 
para o microscópio e visualizado com objetiva de 40X. 
6. AVALIANDO OS RESULTADOS 
Os resultados da prática foram respondidos no tópico “Resultados e 
discussões” deste relatório. 
7. FINALIZANDO O EXPERIMENTO 
A limpeza de todos os materiais utilizados foi feita e desligado o microscópio. 
 
 
RESULTADOS E DISCUSSÕES 
Foi possível visualizar e identificar as estruturas fúngicas vegetativas e a esporulação, 
com o uso do lactofenol e do KOH. A prática foi muito boa para o aprendizado e o 
objetivo foi alcançado. 
 
1. Cite as principais consequências de cortar o meio de cultura pequeno ou 
grande demais. 
Ao cortar pequeno demais pode causar a diminuição de nutrientes para o 
crescimento e afetar a sobrevivência do microrganismo. E ao cortar grande 
demais terá uma diluição dos nutrientes, dificultando a identificação e 
presença dos microrganismos. 
2. Qual a diferença prática (vista no microscópio) do lactofenol para o KOH? 
O lactofenol permite a visualização corando as estruturas fúngicas e o KOH 
permite a visualização dissolvendo as células vegetais, deixando somente as 
estruturas fúngicas visíveis. 
 
 
 
 
 
 
 
 
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REGISTRO FOTOGRÁFICO 
Durante a prática realize 1 registro fotográfico em que você aparece executando a 
prática. Você pode tirar um selfie. 
 
 
REFERÊNCIAS 
OLIVEIRA, Jeferson Carvalhaes de. Tópicos em Micologia Médica / Jeferson Carvalhaes 
de Oliveira – Rio de Janeiro; 2014. 230 págs,; il. col. Revisado 2022.