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Técnica de Kato-Katz 
 
1. Introdução 
O método de Kato-katz é o procedimento recomendado pela Organização Mundial 
de Saúde (OMS) tanto para estudos de diagnósticos individuais como para a pesquisa de 
medicamentos anti-helmínticos e para estudos epidemiológicos. O método de Kato-katz 
quantifica uma pequena porção de fezes, combinando um cartão retangular de papelão, 
com pequeno orifício central e o esfregaço espesso de fezes. O procedimento 
demonstra possuir excelente sensibilidade e reprodutibilidade. 
A grande vantagem do método é o uso de significativa porção de fezes (50 a 
60mg), a qual é examinada diretamente sem o emprego de outros procedimentos de 
concentração. No método Kato-katz é obrigatório o uso de amostras fecais frescas ou 
refrigeradas (por um período de tempo pequeno), não possibilitando o uso de espécimes 
preservados pelos fixadores tradicionais, os quais promovem liquefação e diluição, 
possivelmente, as propriedades de clarificação da mistura de glicerina, prejudicando a 
execução do método. 
 
2. Objetivo 
Este método é indicado para pesquisa de ovos de S. mansoni, A. lumbricoides, T. 
trichiura e Ancylostomidae. Cistos de protozoários não são visualizados nessa 
preparação. Não é possível a execução deste método em fezes diarréicas. 
 
3. Amostra 
Amostras fecais frescas ou refrigeradas (por um período de tempo pequeno). Não 
usar fezes preservadas. 
 
 
 
CURSO DE GRADUAÇÃO EM FARMÁCIA 
 
DISCIPLINA PARASITOLOGIA CLÍNICA 
PERÍODO 7º PERÍODO 
 
ALUNOS 
 
ANDERSON OLIVEIRA 
FRANCIJUNIOR ARAÚJO 
FACULDADE ANGLO-AMERICANO JOÃO PESSOA 
FACULDADE DE CIÊNCIAS MÉDICAS DA PARAÍBA 
 
4. Material 
 Espátula de madeira ou plástico 
 Lamínula de celofane molhável de espessura média e 20x26 mm em tamanho 
 Lâmina comum de microscopia (26x76mm) 
 Tela de metal (60 ou 80 malhas) ou de náilon (105 malhas) 
 Cartão retangular (3cm x 4cm 1,37mm) com um orifício central de 6mm de diâmetro 
 Palito de madeira ou de plástico 
 Papel absorvente 
 
5. Reagente 
 Verde de malaquita (Cl 42000) (C23H25N2)2. 3C2H2O4 
 Fenol fundido a 44ºC (C6H6O) 
 Glicerina (C3H8O3) 
 
 
6. Método 
 Usar luvas durante todas as etapas do procedimento; 
 Retira-se uma amostra de fezes com auxílio da espátula e colocar sobre um papael 
absorvente; 
 Coloca-se sobre as fezes a tela de filtro comprimindo-a com a espátula, o que fará 
com que parte das fezes passe através da malha; 
 Usar a espátula para recolher as fezes que passaram pela malha e depositar no 
orifício da placa perfurada, que já deverá estar sobre a lâmina de vidro de 
microscópio; 
 Comprimir as fezes no orifício da placa perfurada até que esteja cheio; 
 Passar a espátula sobre a placa perfurada para retirar o excesso de fezes. Descartar 
em lixo apropriado a espátula e a tela de filtro; 
 Levantar, inclinando inicialmente uma das extremidades da placa perfurada e retira-
la de modo a ficar sobre a lâmina de vidro o cilindro do material fecal. Descartar em 
lixo apropriado a placa perfurada; 
 Coloca-se a solução do frasco em um recipiente e mergulha as lamínulas nesta 
solução e deixar embebida na solução previamente por 24 horas; 
 Pegar a lamínula da solução, esperar que escorra o excesso e colocar sobre o cilindro 
da amostra de fezes, a lamínula pré-colorida; 
 Inverte-se a preparação sobre uma superfície lisa e fazer pressão com o polegar sobre 
a região onde se encontra a amostra de fezes, de modo que o material se espalhe 
uniformemente entre a lâmina e lamínula. Evita-se que as fezes extravasem; 
 Deixa-se a preparação em repouso durante 1 hora à temperatura ambiente; 
 Levar a preparação ao microcópio para a observação e contagem de ovos helmintos. 
Inicialmente em objetiva de 10x e se necessário, usar a objetiva de 40x. 
 
 
 
4. Referência 
 
DE CARLI, G.A. Parasotologia Clínica – Seleção de Métodos e Técnicas de 
Laboratório para o diagnóstico das Parasitoses Humanos. 2. Ed. São Paulo: Atheneu, 
2008