202636_205749_Diagnóstico Laboratorial de Parasitismo

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Diagnóstico Laboratorial de Parasitismo 
 Coletadas preferencialmente do reto e examinadas ainda frescas (Grandes animais). 
 Eliminação espontânea  Fezes coletadas do campo ou do chão, o ideal é que a coleta 
seja realizada apenas se foi observado o momento em que o animal defecou. 
 Auxilio de Luva de plástico para a coleta. 
 Amostras individuais (Pequenos animais)
 Pelo menos 10 amostras por rebanho (Grandes animais). 
 Aproximadamente 5 g de fezes 
 Armazenamento refrigerado/ agentes químicos: Formalina 
EXAME DE FEZES
MÉTODOS DE EXAME DE FEZES: Classificação
Métodos
Método Quantitativo: Destinadas não só a 
detectar a presença de ovos, oocistos. Mas 
avaliam o número e grau de infecção
Método Qualitativo: Destinadas a detectar a 
presença de ovos, oocistos, larvas 
independente dos níveis de infestação
MÉTODOS DE EXAME DE FEZES
Método do esfregaço direto
 Gotas de Sol. Fisiológica e uma quantidade equivalente de fezes misturadas a uma 
lâmina de microscópio. Uma lamínula é colocada sobre o líquido e a preparação é então 
examinada microscopicamente.
A- Fazer duas lâminas por amostra
B - Adicionar uma gota de solução 
fisiológica em cada lâmina 
C - Adicionar uma gota de fezes 
diarreicas em cada lâmina 
D - Corar com Lugol uma das lâminas, 
Cobrir as duas lâminas com lamínulas
MÉTODOS DE EXAME DE FEZES: Flutuação
 Método de flutuação  ovos dos parasitas são suspensos em um líquido com densidade 
maior que aquela dos ovos Ovos flutuarão para a superfície
Método do flutuação: Willis-Mollay
Flutuação qualitativa ovos/g/fezes
Método do flutuação: Gordon e Whitlock
modificada- OPG-
Flutuação quantitativa ovos/g/fezes
Método do centrífugo-flutuação: Faust
Centrifugação e Flutuação qualitativa em 
sulfato de Zinco
Método do flutuação: Willis-Mollay
Identificação: ovos e larvas de nematódeos, oocistos de 
protozoário
Material: 
 Fezes (2-5g)
 Solução Hipersaturada
de Nacl ou açúcar
 Peneira ou Gaze
 Proveta graduada 
(100ml)
 Bastão de vidro ou 
palito de sorvete 
Copo e pipeta 
 Lâmina e lamínula . 
 Técnica:
 Pesar as fezes, Homogeneizar a amostra e 
mistura-las com a sol. Saturada (cerca de 20ml), 
com auxílio de basta ou palito
 Filtrar a suspensão de fezes com auxilio de 
peneira ou gaze
 Colocar a suspensão de fezes Filtrada em no 
copo até formar menisco
 Colocar Lâmina de vidro sobre o copo, com 
cuidado
 Deixar em repouso por 15 min. 
 Remover a lâmina, invertendo sua posição 
rapidamente. Examinar em microscópio em 
objetiva de 10x
Método do flutuação: Gordon e Whitlock modificada- OPG-
Identificação: ovos de helmintos/g de fezes
Material: 
•Fezes (Bovinos, equinos e suínos= 4g)
(Ovinos e Caprinos= 2g)
•Solução Hipersaturada de Nacl ou açúcar (Bovinos, equinos e suínos= 56ml)
(Ovinos e Caprinos= 58ml)
• Peneira ou Gaze
•Proveta graduada (100ml)
•Bastão de vidro ou palito de sorvete 
•Copo e pipeta 
•Câmara de MacMaster. 
Método do flutuação: Gordon e Whitlock modificada- OPG-
Flutuação quantitativa ovos/g/fezesTécnica:
1. Pesar as fezes e mistura-las com a sol. Saturada, com auxílio de basta ou palito
2. Filtrar a suspensão de fezes com auxilio de peneira ou gaze
3. Homogeneizar o liquido com a pipeta, retirar amostra para preencher cada célula 
da câmara de MacMaster. Repetir operação até completar ambas laterais da 
câmara
4. Esperar 2 min. para os ovos flutuarem e observar em microscópio (objetiva de 10x), 
realizara contagem de cada lado da câmara
Calculo de OPG
O total de ovos encontrados em ambos os lados da câmara somados deve ser 
multiplicado x50 para Bovinos equinos e suínos (56ml), –ou- x100 para ovinos e 
caprinos (58ml) 
Avaliação nível de infestação: Gordon e Whitlock
modificada- OPG-
Flutuação quantitativa ovos/g/fezes
Avaliação nível de infestação: Gordon e Whitlock
modificada- OPG-
Flutuação quantitativa ovos/g/fezes
Método do flutuação: Faust
Identificação: oocistos de protozoário
 Material: 
 Fezes (2-5g)
 Água destilada
 Solução de sulfato de ZINCO
 Peneira ou Gaze
 Bastão de vidro ou palito de 
sorvete 
 Copo
 Tubo de centrífuga e pipeta 
 Centrífuga 
 Alça de paltina
 Lâmina e lamínula . 
 Técnica:
 Pesar as fezes, Homogeneizar a amostra e mistura-las com a água destilada(cerca de 
10ml), com auxílio de basta ou palito
 Filtrar a suspensão de fezes com auxilio de peneira ou gaze em outro copo e com 
auxílio de pipeta transferir material para tubo centrífuga 
 Centrifugar o filtrado por 1 min a 2.500rpm, descartar sobrenadante e reter o 
sedimento
 Adicionar ao sedimento mais 10 ml de água destilada e centrifugar novamente. 
Repetir processo até clarificar suspensão
 Adicionar 2-3 ml de Sulfato de Zinco, homogeneizar e completar vol. do tubo
 Centrifugar por 1 min. a 2.500 rpm e deixar em repouso por 5 min. 
 Com alça de platina coletar película superficial, colocar em lâmina adicionar 1 gota 
de lugol e cobrir com lamínula. Examinar em microscópio em objetiva de 10x
Método do flutuação: Faust
Identificação: oocistos de protozoário
MÉTODOS DE EXAME DE FEZES: Sedimentação
 Método de Sedimentação  São utilizadas para pesquisa de ovos pesados, como os de 
alguns gêneros de Trematoda e Cestoda Ovos serão depositados no fundo do recipiente
Método do Sedimentação: Hoffman
Sedimentação qualitativa ovos/fezes
Método do Centrífugo-Sedimentação- Ritchie 
Centrífugo sedimentação qualitativa ovos/fezes
em Formol e Éter
Método do Sedimentação: Hoffman
Identificação: ovos e Cetódeos e Trmatódeos
 Material: 
 2 a 5 g de fezes
 Solução fisiológica ou água de 
torneira
 Lâmina e lamínula
 Bastão de vidro
 Peneira
 •Béquer com capacidade de 
250 a 500 mℓ
 Cálice de sedimentação (300 a 
500 mℓ)
 Pipeta. 
 Técnica:
 Diluir as fezes em 200 mℓ de solução fisiológica ou 
água no béquer. 
 Peneirar a suspensão no cálice de sedimentação
 Deixar em repouso por 15 min
 Decantar o sobrenadante e adicionar ao 
sedimento 200 mℓ de solução fisiológica ou água
 Deixar em repouso por mais 15 min
 Decantar o líquido sobrenadante
 Coletar, com uma pipeta, algumas gotas do 
sedimento
 Examinar ao microscópio entre lâmina e lamínula 
em aumento de 10 e 40x
Método do Centrífugo-Sedimentação- Ritchie 
Identificação: ovos e Cetódeos e Trmatódeos
Material: 
 2 a 5 g de fezes
 Sol. Fisiológica
 Éter sulfúrico
 Formol 7,5%
 Lugol
 Lâmina e lamínula
 Bastão de vidro
 Peneira
 Tubo de centrífuga
 Pipeta. 
Método do Centrífugo-Sedimentação- Ritchie 
Identificação: ovos e Cetódeos e Trmatódeos
 Técnica: Parte 1
 Diluir as fezes em 10 mℓ de solução 
fisiológica
 Peneirar a suspensão e transferir para tubo 
de centrífuga
 Centrifugar por 2 min a 2.000rpm
 Desprezar o sobrenadante e adicionar ao 
sedimento 10 mℓ de solução fisiológica e 
repetir etapa anterior
 Add. ao sedimento 10 ml de formol 7,5% 
(não deixar ovos de trematódeos 
flutuarem e repousar por 20 min
 Técnica: Parte 2
 Acrescentar 3 ml de éter sulúrico
 Centrifugar por 2 min a 2.000rpm
 Retirar gordura depositada na borda do 
tubo e desprezar sobrenadante
 Coletar, com uma pipeta, algumas gotas do 
sedimento e Add. uma gota de lugol ao 
sedimento
 Examinar ao microscópio entre lâmina e 
lamínula em aumento de 10 e 40x
CHAVES DE IDENTIFICAÇÃO DE OVOS
MÉTODOS DE EXAME DE FEZES: Recuperação de larvas
 Usada para a identificação de larvais vivas de nematoides nas fezes e detecção de vermes 
pulmonares.
Método de Recuperação de larvas: Baermann
Identificação qualitativa de vermes pulmonares
Método Roberts & O’Sullivan- Coprocultura-
Identificação qualitativa/quantitativa de Identificação 
larvas infectantes
Método de Recuperação de larvas: Baermann
Identificação qualitativa de vermes pulmonares
Material: 
 10g fezes
 Recipiente cônico
Gaze e barbante
 Palito de sorvete ou 
churrasco
 Suporte p/recipiente 
cônico
 Pipeta de Pasteur
 Técnica:
 Envolver as fezes em gaze e amarrar com 
barbante
Colocar gaze amarrada em palito 
apoiada em recipiente cônico
 Acrescentar água morna até o nível da 
gaze, entrando em contato com fezes
 Deixar repousar 2-4h (até 12h), com auxilio 
de pipeta de Pasteur coletar 1ml do 
sedimento
 Avaliar material em lâmina e lamínula sob 
microscopia 
Método Roberts & O’Sullivan- Coprocultura-
Identificação qualitativa/quantitativa de Identificação 
larvas infectantes
Material: 
• 3-5g fezes
• Bastão de vidro ou palito de sorvete
• Serragem de madeira ou areia esterilizada
• Copo de vidro
• Placa de Petri
• Pipeta 
Método Roberts & O’Sullivan- Coprocultura-
Identificação qualitativa/quantitativa de Identificação 
larvas infectantes
 Técnica:
 Misturar em um copo as fezes com a areia ou serragem (mistura homogênea e solta)
 Colocar a mistura no copo. Com um bastão e fazer furo no centro da mistura para 
promover aeração. Borrifar cultura com água sem umedecer muito 
 Cobrir o copo com a placa de Petri e identifica-lo e colocar um barbante entre a placa 
e o copo para evitar abafamento. Colocar a cultura em estufa (25-27ºC) durante 7 dias
 Após 7 dias, Retirar da estufa, acrescentar água até encher o copo 
 Cobrir novamente com placa de petri
 Inverter a cultura e acrescentar água morna no espaço livre da placa (migração larval)
 Retirar o líquido da placa
 Colocar o líquido em tudo de ensaio, guardar em geladeira por 30min- 3 horas para a 
sedimentação larval
CHAVES DE IDENTIFICAÇÃO DE LARVAS
DEMAIS MÉTODOS DIAGNÓSTICOS UTILIZADOS NA 
ROTINA
Métodos
Exames de pele: Raspados cutâneos/ 
Imprints/ citologias de pele/ biópsias para 
identificação de ácaros/ protozoários/ 
fungos...
Exames Hematológicos: Esfregaços com Amostras 
de sangue ou linfa e colocar ação específica para 
identificação de protozoários/bactéria/ riquétsias
 PROCEDIMENTO
 Selecionar a área desejada (3 regiões 
diferentes). 
 Add pequena quantidade de óleo 
mineral nas regiões. 
 Na raspagem, utilize uma lâmina de 
bisturi nº 10.
 Mergulhe a parte cortante ou a base da 
lâmina em óleo mineral.
 Iniciar a raspagem no sentido à favor do 
crescimento dos pelos, até exsudação de 
conteúdo - sangramento peq. 
quantidade. 
 Interessante pinçar a região com os 
dedos. 
 Depositar o material sobre a lâmina
 PROCEDIMENTO: 
 Introduzir o swab do início do canal 
vertical, prolongando-se até o canal 
horizontal 
 Realizar movimentos circulares e verticais, 
para obtenção de uma amostra repleta 
de celularidade. 
 Transferir a amostra para uma lâmina, 
apoiando a porção do swab, realizando 
na sequência movimentos giratórios 
contínuos, por toda a extensão da 
mesma. 
06/03/2026
06/03/2026
DEMAIS MÉTODOS DIAGNÓSTICOS UTILIZADOS NA 
ROTINA
Métodos Sorológicos/imunológicos:
ELISA/RIFI: Avaliação de Antígenos (substancias
que são consideradas ''estranhas'' ou invasoras
pelo corpo)/ou Anticorpos (defesa produzida pelo
hosp.)
Identificação de material genético (PCR):
Detecção e quantificação de DNA/ RNA de
agentes infecciosos. São Sensíveis e específicos
e podem ser aplicados a qualquer estágio do
ciclo evolutivo do parasita. Demandam de lab.
e mão de obra especializada ($)
OBRIGADA