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PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO 
(POP) 
POP. n° 1 - Página 01/06 
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VISUALIZAÇÃO DE TAENIA, ENTEROBIUS, 
TRICURIS E SHISTOSOMA 
Emissão: 
03/ 10/2024 
Próxima 
revisão: 
15/10/2026 Versão: 01 
 
1. OBJETIVO(S) 
Este Procedimento Operacional Padrão (POP) tem como objetivo padronizar a conduta para 
realização da visualização de Taenia, ENTEROBIUS, Tricuris e Shistosoma, que tem como finalidade 
analisar a presença dos parasitas nas fezes, que podem ou não, ser visíveis a olho nu. 
 
2. MATERIA E EQUIPAMENTOS 
 
Materiais utilizados para a visualização e detecção de Taenia, Enterobius, Trichuris, e Schistosoma 
em exames laboratoriais incluem: 
 Microscópio. Essencial para a visualização dos ovos ou larvas de todos os parasitas 
mencionados; 
 Lâminas e lamínulas; 
 Fita adesiva ou fita gomada (Técnica de Graham) Usada principalmente para Enterobius 
vermicularis, onde a fita é pressionada contra a região perianal para coletar os ovos, que são 
depois visualizados no microscópio. 
 Soluções preservadoras e reagentes: 
 Solução salina: Usada para diluir as fezes e facilitar a visualização dos parasitas. Formol: 
Pode ser usado para preservar amostras de fezes para exames posteriores. Lugol: Facilita a 
coloração de algumas estruturas parasitárias, tornando-as mais visíveis no microscópio; 
 Tubos coletores de fezes: Utilizados para coletar amostras de fezes que serão analisadas 
para a presença de ovos ou parasitas adultos (Taenia, Trichuris, Schistosoma); 
 Centrífuga (opcional) Em certos métodos, como o de concentração de Kato-Katz (para 
Schistosoma mansoni), a centrifugação pode ser utilizada para concentrar os ovos 
parasitários; 
 Papel celofane (para técnica de Kato-Katz) Usado para Schistosoma e outros parasitas em 
exames de fezes. As fezes são aplicadas em uma lâmina, cobertas com papel celofane 
embebido em glicerol, e observadas após clarificação; 
 Exame macroscópico (Taenia) Para a Taenia, pode-se realizar a inspeção visual de 
proglótides (segmentos) nas fezes, sem necessidade de microscópio em alguns casos; 
 Exame de urina (Schistosoma haematobium) Amostras de urina, coletadas principalmente 
ao meio-dia, podem ser analisadas para a detecção de ovos de Schistosoma haematobium. 
Esses materiais são fundamentais para a coleta, preparo e visualização das amostras 
parasitárias. 
 
 
 
 
 
 
 
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3. ABRANGÊNCIA 
Este procedimento é destinado aos profissionais de laboratório do setor de parasitologia clínica, 
além de estudantes da área de saúde que possuem esta disciplina na grade curricular, como os 
alunos da rede UniFTC de Ensino Superior. 
 
4. DEFINIÇÕES 
O intuito do teste de parasitologia pelo método de Graham é proporcionar um diagnóstico preciso e 
rápido de infecções por oxiúros. A identificação precoce permite o início do tratamento adequado, 
ajudando a evitar a propagação do parasita, especialmente em ambientes coletivos, como escolas. 
Além disso, a detecção também contribui para a promoção da saúde pública, uma vez que a 
infecção por oxiúros é uma questão relevante, principalmente entre crianças. 
 
5. PROCEDIMENTO DETALHADO 
 
Orientar o paciente no momento do agendamento do exame a não realizar higiene nem utilizar 
pomadas ou cremes na região anal no dia da coleta e comparecer ao laboratório para coleta pela 
manhã, antes de defecar. 
Fixar, em uma lâmina, uma tira de 5 a 6 cm de fita durex transparente, colocando, nas duas 
extremidades, tiras de papel ou etiqueta branca de aproximadamente 4cm, as quais servirão de 
suporte para segurar. Destacar a fita da lâmina e colocar sobre o fundo de um tubo de ensaio com o 
lado aderente voltado para fora. 
Instruir o paciente deitar sobre as costas, com as pernas dobradas sobre o abdômen e aplicar 
pressão com um tubo de ensaio envolto na fita adesiva varias vezes sob o local de coleta (região 
perianal). 
Retirar a fita tubo e dispô-la cuidadosamente esticada com o lado adesivo para baixo sobre uma 
lâmina previamente identificada com nome e código do paciente. Pressionar firmemente para não 
ficarem bolhas de ar e rugosidades. 
Encaminhar a lâmina com a ordem de serviço do paciente para verificação pelo analista clínico 
presente no setor de parasitologia. 
Realizar a leitura da lâmina com as objetivas de 10x e 40x e anotar o resultado na ordem de serviço 
do paciente. Inserir no sistema ou encaminhar o resultado ao setor de digitação para inserirem no 
sistema. Conferir o resultado inserido e liberá-lo; 
 
 
 
 
 
 
 
 
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6. CONTROLE DE QUALIDADE 
 
Um controle de qualidade interno está integrado ao teste. A presença de uma linha colorida na 
região de controle é um indicador de qualidade. Essa linha confirma que o volume de amostra foi 
adequado, que a absorção da membrana ocorreu corretamente e que a técnica do procedimento 
foi executada de forma apropriada. 
 
As Boas Práticas de Laboratório recomendam o uso de materiais de controle. Os usuários devem 
seguir as normas e regulamentações federais e estaduais pertinentes quanto à frequência de 
análise de materiais de controle de qualidade externos. Em casos de erros ou desvios na coleta, o 
teste deve ser repetido ou considerado indeterminado, mesmo que a linha de controle apareça. 
 
7. SEGURANÇA E BIOSSEGURANÇA 
 
 Lave bem as mãos antes e depois do procedimento, mesmo que esteja usando luvas; 
 Isso é essencial para evitar a transmissão de microrganismos e substâncias químicas. 
 Uso de Equipamento de Proteção Individual (EPI): 
 Utilize luvas descartáveis durante todo o procedimento para evitar contato direto com 
as amostras biológicas; 
 É necessário vestir avental, máscara, calça e calçados fechados para se proteger contra 
respingos e aerossóis. 
 Área de Trabalho Organizada: 
 Execute o procedimento em uma área específica e limpa, de preferência próxima a 
uma pia para facilitar a lavagem das mãos; 
 Higienize a superfície de trabalho com desinfetante antes e após o procedimento. 
 
Prevenção de Contaminação Cruzada: 
 Mantenha as amostras, reagentes e materiais de teste afastados de alimentos, 
bebidas e objetos pessoais; 
 Evite tocar em outras superfícies ou itens enquanto estiver manipulando as amostras e 
reagentes. 
 Leia e Siga as Instruções: 
 Familiarize-se com as instruções do kit de teste e siga-as à risca para garantir a precisão 
dos resultados e a segurança 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
8. ANEXOS 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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9. REFERÊNCIAS 
 
PARASITOLOGIA – MÉTODO DE GRAHAM OU FITA GOMADA. Disponivel em: 
https://www.gov.br/ebserh/pt-br/hospitais-universitarios/regiao-centro-oeste/hu-ufgd/acesso-a-
informacao/pops-protocolos-e-processos/gerencia-de-atencao-a-saude-gas/laboratorio-de-
analises-clinicas/portaria-18-pop-ulacp-047-parasitologia-metodo-de-graham-ou-fita-gomada 
 
DE VETORES, S. E. DE V. EM S. E. R. C. DA V. A. E. S. DO T. E. DA T. C. DE V. E. E. C. Guia para 
pesquisa de ovos de helmintos em fezes através do método Kato-Katz. Disponível em: 
.Acesso em: 2 out. 2024. 
 
 
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10. HISTÓRICO DE REVISÃO 
 
VERSÃO DATA DESCRIÇÃO 
01 03/10/2024 Realização do POP de visualização de Taenia, Enterobius, Tricuris e 
Shistosoma 
 
 
 
 
Elaboração/Revisão: 
 
Alan Santos Cruz 
Bruna Santana de Jesus 
Daniele Vitória Brito Santos 
Gleycy Kelly Santos Moura 
Isabela Araújo de Oliveira 
Isaías Carneiro Dos Santos 
Julia Costa Vale da Silva 
Larissa Souza dos Santos 
Lisandra de Andrade Carneiro 
Macaulin Vieira dos Santos 
 
 
Data: 03/10/2024 
 
Aprovação: 
Rosalina Guedes 
 
Data: 03/10/2024