Espermatogênese e Infertilidade

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05/06/2024 
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Profa. Mylene de Melo Silva 
Curso: Medicina – 1ª série 
Módulo: Concepção e Formação do Ser Humano 
ESPERMOGRAMA 
CONCEITO 
Exame preliminar que fornece informações 
importantes em relação à espermatogênese e à 
permeabilidade do sistema reprodutor masculino. 
ESPERMOGRAMA 
ASPECTOS TÉCNICOS 
• Análise dos aspectos macro e microscópicos do sêmen, podendo identificar 
alterações espermáticas que causam infertilidade. 
• Para análise da infertilidade, deve ser realizado pelo menos mais dois 
espermogramas devido à ampla variabilidade individual, num intervalo entre 7 
a 90 dias. 
• Importante realização de outros exames para identificar as causas da 
alteração, incluindo dosagens hormonais, exames genéticos, ultrassonografia 
da bolsa escrotal e ressonância magnética da pelve. 
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ESPERMOGRAMA 
INDICAÇÕES 
• Avaliação da fertilidade; 
• Doação de sêmen; 
• Tratamentos de reprodução assistida: 
o Inseminação artificial; 
o Fertilização in vitro (FIV); 
• Monitoramento da vasectomia e da correção de varicocele. 
PRÉ-ANÁLISE ANÁLISE PÓS-ANÁLISE 
PRÉ-ANÁLISE 
• Caxumba 
• Diabetes 
• Torção dos testículos 
• Criptorquidia 
Antecedentes 
mórbidos 
• Uso de drogas 
• Esteroides anabolizantes 
• Uso de medicamentos 
• Exposição profissional a 
substâncias tóxicas, radiação ou altas temperaturas 
Hábitos e 
fatores externos 
• Motivo do exame 
• Filhos anteriores (quantidade, idade do mais novo) 
 
Outras 
informações 
• Ejaculação retrógrada 
• Paraplegia 
• Doenças reumáticas 
• Exercícios físicos em excesso 
• Obesidade e magreza excessiva 
Anamnese 
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PRÉ-ANÁLISE Coleta da amostra 
• Necessária abstinência sexual de 3 a 5 dias (2 a 7 dias). 
• Não coletar por relação sexual interrompida. 
• Não utilizar preservativo, lubrificantes, nem saliva. 
• Não tocar na parte interna do frasco coletor. 
PRÉ-ANÁLISE Coleta da amostra 
Expor a glande e manter 
o prepúcio retraído. 
Lavar o pênis com água e 
sabão e enxaguar com 
água em abundância. 
Enxugar o pênis com 
papel toalha ou gaze. 
Coletar por masturbação, 
todo o conteúdo, 
diretamente no coletor 
Fechar o frasco e encaminhá-lo 
de imediato ao laboratório. 
Desprezar a urina no 
vaso sanitário. 
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Lavar as mãos antes do 
procedimento. 
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PRÉ-ANÁLISE 
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ANÁLISE 
• Cor 
• Volume 
• Odor 
Macroscópicos 
• Viscosidade 
• Consistência 
• pH 
Físico-químicos 
• Morfologia 
• Contagem 
• Motilidade 
• Viabilidade 
Microscópicos 
Parâmetros avaliados 
ANÁLISE 
• Cor 
• Volume 
• Odor 
Macroscópicos 
• Viscosidade 
• Consistência 
• pH 
Físico-químicos 
• Morfologia 
• Contagem 
• Motilidade 
• Viabilidade 
Microscópicos 
Parâmetros avaliados 
COR: 
• Normal: branco acinzentado opalescente 
• Amarelo purulento: processos piogênicos agudos 
• Vermelho: processos hemorrágicos relacionados a problemas de próstata e 
vesícula seminal ou rompimento de vasos durante a ejaculação 
• Amarelo intenso: pode ocorrer na icterícia. 
Macroscópicos 
 A opalescência é proporcional à população celular: 
na azoospermia o aspecto fica mais translúcido e 
em alta população celular, fica mais opaco. 
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VOLUME: 
• Normospermia (normal): entre 1,5 e 5,0 mL 
• Hipospermia (diminuído): < 1,5 mL 
• Hiperespermia (aumentado): > 5,0 mL 
• Aspermia: ausência de ejaculado. 
Macroscópicos 
Composição do sêmen 
Soma das secreções dos testículos e glândulas 
anexas, dependendo diretamente da frequência de 
ejaculações (alta frequência x abstinência). 
ODOR: 
• Característico: lembra o odor de água sanitária (hipoclorito de sódio) 
Macroscópicos 
 Aminas alcalinas como a putrescina, espermina , espermidina e cadaverina são 
responsáveis pelo cheiro e sabor alcalino do sémen. 
 Têm a função de neutralizar o ambiente ácido do canal vaginal, protegendo os 
espermatozoides e seu DNA. 
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ANÁLISE 
• Cor 
• Volume 
• Odor 
Macroscópicos 
• pH 
• Viscosidade 
• Consistência 
Físico-químicos 
• Morfologia 
• Contagem 
• Motilidade 
• Viabilidade 
Microscópicos 
Parâmetros avaliados 
pH: 
Reflete o balanço entre os valores de pH, principalmente, da secreção vesicular 
seminal (alcalina) e secreção prostática (ácida). 
• Normal: ≥ 7,2 (geralmente < 8,0). 
• Ácido: < 7,0  deficiência de vesículas seminais, ausência de coagulação 
ou infecção bacteriana. 
• Alcalino: > 8,0  geralmente não apresentam informação clinicamente útil. 
Físico-químicos 
 O frasco deve ser mantido bem fechado para 
evitar contato com o ar, que pode resultar em 
aumento de pH pela ação da anidrase 
carbônica. 
VISCOSIDADE: 
 Depende da ação resultante de coagulação e liquefação; 
• Normal: a amostra se alongará em filete < 2 cm . 
• Diminuída: a amostra se desprende da pipeta em gotas ou filetes curtos. 
• Aumentada: a amostra se alongará em filete > 2 cm (pode resultar em 
diminuição da motilidade) 
Físico-químicos 
Viscosímetro (padrão 
ouro) ou Teste da pipeta 
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CONSISTÊNCIA: 
 Após ejaculação, o esperma coagula para facilitar a dispersão dos espermatozoides 
e protegê-los da acidez vaginal. Em temperatura ambiente, a amostra se liquefaz 
dentro de 5 a 60 minutos. 
• Tempo de coagulação normal: imediata. 
• Coagulação reduzida ou ausente: deficiência de fatores de coagulação das 
vesículas seminais (agenesia ou obstrução dos ductos). 
 
• Tempo de liquefação normal: ≤ 60 minutos. 
• Liquefação reduzida ou ausente: deficiência de fatores de liquefação 
(espermolisinas) da próstata (agenesia ou afecções). 
Físico-químicos 
Manter a 37ºC em 
banho-maria ou estufa 
ANÁLISE 
• Cor 
• Volume 
• Odor 
Macroscópicos 
• Viscosidade 
• Consistência 
• pH 
Físico-químicos 
• Viabilidade ou Vitalidade 
• Motilidade ou Mobilidade 
• Morfologia 
• Contagem (concentração espermática) 
Microscópicos 
Parâmetros avaliados 
VIABILIDADE OU VITALIDADE: 
 Permite avaliar se os espermatozoides imóveis estão vivos, mas incapazes de 
se mover, ou realmente mortos. 
 A diferenciação é feita com base na exclusão do corante (eosina) pela 
membrana plasmática intacta dos espermatozoides vivos e a permeabilidade 
ao corante em espermatozoides mortos. 
• Espermatozoides móveis: ≥ 40% 
• Espermatozoides vivos: ≥ 58% 
Microscópicos 
Espermatozoides vivos não corados 
e os mortos, corados em rosa. 
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MOTILIDADE OU MOBILIDADE: 
 Ideal utilizar câmaras apropriadas, com profundidade conhecida (ex.: Makler®). 
Geralmente realizada em microscopia óptica comum entre lâmina e lamínula. 
Análise bastante subjetiva. 
 Correta homogeneização da amostra, análise em, no máximo, 60 minutos após a 
coleta, e a leitura em, no máximo, 60 segundos após montagem da lâmina. 
 Deve ser realizada em duplicata, avaliando pelo menos 10 campos em aumento 
de 400 vezes. A discrepância entre as replicatas não deve ultrapassar 10%. 
Microscópicos 
MOTILIDADE OU MOBILIDADE: 
A. Progressivos rápidos: movimentos visíveis da cauda, espermatozoide 
corta o campo microscópico, sem mudar de direção, de forma rápida). 
B. Progressivos lentos: progressão lenta ou média para frente. 
C. Não progressivos: direção indefinida, errático, em círculos. 
D. Estacionários: imóveis, inviáveis, aderidos ao muco ou mortos. 
Movimento dos espermatozoides ocorre 
em espiral, de forma semelhante a um 
saca-rolha (Gadelha et al, 2020) 
 Atualmente a OMS considera A e B simplesmente como progressivos e 
sua porcentagem deve ser superior a 32%. 
MORFOLOGIA ESPERMÁTICA: 
 Parâmetro de extrema importância para avaliação da qualidade e viabilidade 
dos espermatozoides. 
 Consiste na avaliação da cabeça, peça intermediária e cauda do 
espermatozoide, por meio de esfregaço corado pelo Papanicolau ou colorações 
tipo Romanovsky, como Giemsa ou Wright. 
Microscópicos 
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MORFOLOGIA ESPERMÁTICA: 
 O esfregaço deve ser preparado a partir da “papa de sêmen”, após 
centrifugação da amostra de sêmen com salina estéril na proporção 1:3. 
Microscópicos 
O sistema de classificação morfológica 
recomendado pelo manual da OMS é o é o 
critério estrito de Tygerberg, descrito em 1986 por 
Kruger et al., que emprega a análise morfométrica 
para a determinação do padrão de normalidade. 
Segmento cefálico com forma 
oval e lisa, com acrossomo 
compreendendo de 40% a 70% 
 No espermograma como triagem, a 
análise deve ser feita em aumento 
de 400 X e critérios convencionais 
(aceitam pequenos defeitos); 
Para clínicas de reprodução, a 
análise deve ser realizada em 
aumento de 1000 X e critério estrito 
de Tygerberg (uso de micrômetro). 
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CONTAGEM (CONCENTRAÇÃO ESPERMÁTICA): 
 Número de espermatozoides em milhões por mililitro de sêmen (x106 por ml), 
determinada pela diluição volumétrica associada à hematocitometria 
 Pode ser realizada por meio de contagem em Câmara de Neubauer ou Câmara 
de Makler. 
 Para contagem em Câmara de Neubauer, a amostra deve ser diluída (entre 
1:10 e 1:50 a depender da concentração) e para contagem em câmara de 
Makler, a amostra não deve ser diluída. 
Microscópicos 
Câmara de Neubauer 
Contagem em 5 quadrados do 
quadrante central (hemácias), cada um 
contendo 16 quadrados menores. 
CÂMARA DE NEUBAUER 
Concentração de espermatozoides 
(milhões/mL) = nº de espermatozoides 
contados x diluição x 50.000. 
Deve-se ler 10 quadrantes e multiplicar por 1 milhão. 
O número de espermatozoides contados em 
qualquer faixa de 10 quadrados indica a 
concentração em milhões por mL. 
CÂMARA DE MAKLER 
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A contagem total é obtida do produto da concentração de 
espermatozoides pelo volume da amostra seminal, e o resultado é 
expresso em milhões de espermatozoides por ejaculado 
CONCENTRAÇÃO ESPERMÁTICA 
VALORES DE REFERÊNCIA PARA ESPERMOGRAMA 
SISTEMA DE CLASSIFICAÇÃO OMS 
TERMINOLOGIA UTILIZADA 
Notações mais utilizadas nos laudos diagnósticos de análise seminal e espermograma: 
 
 Normozoospermia: concentração espermática dentro da normalidade, ou seja, 
maior que 15 milhões/ml. 
 Oligozoospermia leve: abaixo de 15 milhões de espermatozoides/ ml. 
 Oligozoospermia moderada: 5 a 10 milhões de espermatozoides /ml. 
 Oligozoospermia acentuada: menor que 5 milhões de espermatozoides /ml. 
 Criptozoospermia: Menor que 1 milhão de espermatozoides /ml. 
 Polizoospermia: valores superiores a 250 milhões de espermatozoides /ml. 
 Azoospermia: ausência total de espermatozoides no ejaculado total, podendo ser 
obeservadas células germinativas. 
 Astenozoospermia: menor que 32% dos espermatozoides com movimentos 
progressivos. 
 Discinesia: mais de 50% dos espermatozoides com movimentos erráticos. 
 
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TERMINOLOGIA UTILIZADA 
Notações mais utilizadas nos laudos diagnósticos de análise seminal e espermograma: 
 
 Necrozoospermia: mais de 58% dos espermatozoides mortos. 
 Teratozoospermia: mais de 60% de espermatozoides com morfologia anormal. 
 Hiperespermia: volume do ejaculado maior que 5,0 ml. 
 Hipospermia: volume do ejaculado menor que 1,5 ml. 
 Aspermia: ausência total do ejaculado. 
 Hematospermia: Presença de hemácias em quantidade abundante. 
 Piospermia: Mais de 1 milhão de piócitos/mL ou acima de 2 por campo em aumento 
de 40 X. 
 Alterações de plasma seminal: Aumento da viscosidade, liquefação, alterações de 
pH, presença de corpos gelatinosos. 
 
 
• GADÊLHA, et al. Human sperm uses asymmetric and anisotropic 
flagellar controls to regulate swimming symmetry and cell steering. 
Science Advances. 2020. Vol 6, Issue 31 
 
• COOPER et al. World Health Organization reference values for 
human semen characteristics. Hum Reprod Update. 2010;16(3):231-45 
 
• PEREIRA, Orildo dos Santos. Espermograma: manual de bancada e 
atlas. 2. ed. São Paulo: Red Publicações, 2022. 94p. 
 
• BARCELOS, Luiz Fernando; AQUINO, Jerolino Lopes. Tratado de 
• análises clínicas. Rio de Janeiro: Atheneu, 2018. 810p. 
 
• STRASINGER, Susan King. . Uroanalise e fluidos biologicos. 3.ed. Sao 
Paulo: Ed. Premier, 2000. 233p. 
Referências bibliográficas