Lab 4 - Contagem Manual de Leucocitos - Obrigatorio - Roteiro

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LABORATÓRIO DE HEMATOLOGIA 
CONTAGEM MANUAL DE LEUCÓCITOS 
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ALGETEC – SOLUÇÕES TECNOLÓGICAS EM EDUCAÇÃO 
CEP: 40260-215 Fone: 71 3272-3504 
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INSTRUÇÕES GERAIS 
 
 
1. Neste experimento, você irá realizar os procedimentos adequados para 
promover contagem global de leucócitos em amostra de sangue utilizando 
câmara de Neubauer. Dessa forma, você poderá determinar o número de 
leucócitos em mm³ de uma amostra de sangue com câmara de Neubauer e 
realizar diluição adequada, identificando possíveis interferências na contagem 
leucocitária. 
 
2. Utilize a seção “Recomendações de Acesso” para melhor aproveitamento da 
experiência virtual e para respostas às perguntas frequentes a respeito do 
VirtuaLab. 
 
3. Caso não saiba como manipular o Laboratório Virtual, utilize o “Tutorial 
VirtuaLab” presente neste Roteiro. 
 
4. Caso já possua familiaridade com o Laboratório Virtual, você encontrará as 
instruções para realização desta prática na subseção “Procedimentos”. 
 
5. Ao finalizar o experimento, responda aos questionamentos da seção “Avaliação 
de Resultados”. 
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RECOMENDAÇÕES DE ACESSO 
 
PARA ACESSAR O VIRTUALAB 
 
 
 
 
 
 
 
 
1. Caso utilize o Windows 10, dê preferência ao navegador Google Chrome; 
2. Caso utilize o Windows 7, dê preferência ao navegador Mozilla Firefox; 
3. Feche outros programas que podem sobrecarregar o seu computador; 
4. Verifique se o seu navegador está atualizado; 
5. Realize teste de velocidade da internet. 
 
Na página a seguir, apresentamos as duas principais dúvidas na utilização dos 
Laboratórios Virtuais. Caso elas não se apliquem ao seu problema, consulte a nossa seção 
de “Perguntas Frequentes”, disponível em: https://algetec.movidesk.com/kb/pt-br/ 
Neste mesmo link, você poderá usar o chat ou abrir um chamado para o contato com 
nossa central de suporte. Se preferir, utilize os QR CODEs para um contato direto por 
Whatsapp (8h às 18h) ou para direcionamento para a central de suporte. Conte conosco! 
ATENÇÃO: 
O LABORATÓRIO VIRTUAL DEVE SER ACESSADO POR COMPUTADOR. ELE NÃO DEVE SER 
ACESSADO POR CELULAR OU TABLET. 
O REQUISITO MÍNIMO PARA O SEU COMPUTADOR É UMA MEMÓRIA RAM DE 4 GB. 
SEU PRIMEIRO ACESSO SERÁ UM POUCO MAIS LENTO, POIS ALGUNS PLUGINS SÃO 
BUSCADOS NO SEU NAVEGADOR. A PARTIR DO SEGUNDO ACESSO, A VELOCIDADE DE 
ABERTURA DOS EXPERIMENTOS SERÁ MAIS RÁPIDA. 
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PERGUNTAS FREQUENTES 
 
 
1) O laboratório virtual está lento, o que devo fazer? 
 
a) No Google Chrome, clique em “Configurações” -> “Avançado” -> “Sistema” -> 
“Utilizar aceleração de hardware sempre que estiver disponível”. Habilite a 
opção e reinicie o navegador. 
 
b) Verifique as configurações do driver de vídeo ou equivalente. Na área de 
trabalho, clique com o botão direito do mouse. Escolha “Configurações 
gráficas” e procure pela configuração de performance. Escolha a opção de 
máximo desempenho. 
Obs.: Os atalhos e procedimentos podem variar de acordo com o driver de 
vídeo instalado na máquina. 
 
c) Feche outros aplicativos e abas que podem sobrecarregar o seu computador. 
 
d) Verifique o uso do disco no Gerenciador de Tarefas (Ctrl + Shift + Esc) -> 
“Detalhes”. Se estiver em 100%, feche outros aplicativos ou reinicie o 
computador. 
 
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2) O laboratório apresentou tela preta, como proceder? 
 
a) No Google Chrome, clique em “Configurações” -> “Avançado” -> “Sistema” -> 
“Utilizar aceleração de hardware sempre que estiver disponível”. Habilite a 
opção e reinicie o navegador. Caso persista, desative a opção e tente 
novamente. 
 
b) Verifique as configurações do driver de vídeo ou equivalente. Na área de 
trabalho, clique com o botão direito do mouse. Escolha “Configurações 
gráficas” e procure pela configuração de performance. Escolha a opção de 
máximo desempenho. 
Obs.: Os atalhos e procedimentos podem variar de acordo com o driver de 
vídeo instalado na máquina. 
 
c) Verifique se o navegador está atualizado. 
 
 
 
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DESCRIÇÃO DO LABORATÓRIO 
 
 
MATERIAIS NECESSÁRIOS 
 
• Câmara de Neubauer; 
• Microscópio; 
• Pipeta de 20 µL; 
• Pipeta de 400 µL; 
• Ponteiras; 
• Solução diluidora; 
• Tubo de coleta; 
• Tubo de ensaio. 
 
PROCEDIMENTOS 
 
1. SEGURANÇA DO EXPERIMENTO 
 
Coloque os equipamentos de proteção individual localizados no “Armário de EPIs”. Nesse 
experimento, é obrigatório o uso de jaleco, luvas, máscara e óculos. 
 
2. DILUINDO A AMOSTRA 
 
Dilua 20 µl da amostra em 400 µl da solução diluente no tubo de ensaio e, em seguida 
homogeneíze a solução. 
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3. FIXANDO A AMOSTRA NA CÂMARA DE NEUBAUER 
 
Preencha os retículos da câmara de contagem com a micropipeta. Feito isso, coloque a 
lamínula aderida firmemente à câmara. 
 
4. OBSERVANDO OS RESULTADOS 
 
Mova a câmara de Neubauer para o microscópio. Execute todas os ajustes necessários para 
visualização. Selecione a objetiva de 10x e 40x para contagem dos leucócitos em cada campo. 
Anote a contagem manual de leucócitos. 
 
5. AVALIANDO OS RESULTADOS 
 
Siga para a seção “Avaliação dos Resultados”, localizada na página 07 deste roteiro, e 
responda de acordo com o que foi observado no experimento, associando também com os 
conhecimentos aprendidos sobre o tema. 
 
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AVALIAÇÃO DOS RESULTADOS 
 
 
 
1. Analisando a quantidade global de leucócitos, a contagem manual realizada 
apresentou como normal, aumentada ou diminuída? 
 
 
 
2. O que espera observar quando o paciente possui leucocitose? E quando o 
paciente possui leucopenia? 
 
 
 
3. Qual objetivo de realizar a contagem absoluta de leucócitos? 
 
 
 
 
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TUTORIAL VIRTUALAB 
 
 
1. SEGURANÇA DO EXPERIMENTO 
 
Visualize o armário de EPIs clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o 
nome “Armário de EPIs” localizada dentro do painel de visualização no canto superior 
esquerdo da tela. Se preferir, também pode ser utilizado o atalho do teclado “Alt+7”. 
 
 
 
 
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Abra o armário clicando com o botão esquerdo do mouse sobre as portas. 
 
 
 
Selecione os EPIs necessários para a realização do ensaio clicando com o botão esquerdo 
do mouse sobre eles. Nesse experimento, é obrigatório o uso de jaleco, luvas, máscara 
e óculos. 
 
 
 
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Feche o armário clicando com o botão esquerdo do mouse sobre as portas. 
 
 
 
 
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2. DILUINDO A AMOSTRA 
 
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome 
“Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+1”. 
 
 
 
Mova a micropipeta de 400 µL para solução diluente clicando com o botão direito do 
mouse sobre ela e selecione a opção “Colocar sobre a solução diluidora”. 
 
 
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Pressione o êmbolo da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele. 
 
 
 
Coloque a micropipeta dentro da solução diluidora clicando com o botão direito do 
mouse sobre ela e selecione a opção “Colocar dentro da solução diluidora”. 
 
 
 
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Aspire 400 µL da solução diluente clicando com o botão direito do mouse sobre o 
êmbolo da pipeta. 
 
 
 
Remova a micropipeta da solução diluidora clicando com o botão direito do mouse 
sobre ela e selecione a opção “Remover da solução diluidora”. 
 
 
 
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Transfira a solução para o tubo de ensaio clicando com o botão direito do mouse sobre 
a micropipeta e selecione a opção “Colocar no tubo de ensaio”. 
 
 
 
Despreze o líquido no tubo de ensaio clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o 
êmbolo da micropipeta. 
 
 
 
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Mova a micropipeta para o suporte clicando com o botão direito do mouse sobre ela e 
selecione a opção “Retornar ao suporte”. 
 
 
 
Mova a micropipeta de 20 µl para o tubo de coleta clicando com o botão direito do 
mouse sobre ela e selecione a opção “Colocar sobre o tubo de coleta”. 
 
 
 
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Pressione o êmbolo da micropipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele. 
 
 
 
Coloque a micropipeta dentro do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse 
sobre ela e selecione a opção “Colocar dentro do tubo de coleta”. 
 
 
 
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Aspire 20 µl da amostra de sangue clicando com o botão direito do mouse sobre o 
êmbolo da micropipeta. 
 
 
 
Remova a micropipeta do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre 
ela e selecione a opção “Remover do tudo de coleta”. 
 
 
 
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Transfira a amostra para o tubo de ensaio clicando com o botão direito do mouse sobre 
a micropipeta e selecione a opção “Colocar no tubo de ensaio”. 
 
 
 
Despreze a amostra no tubo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o êmbolo 
da pipeta. 
 
 
 
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Retorne a micropipeta para o suporte clicando com o botão direito do mouse sobre ela 
e selecionando a opção “Retornar ao suporte”. 
 
 
 
Homogeneíze o tubo de ensaio clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele. 
 
 
 
 
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3. FIXANDO AMOSTRA NA CÂMARA DE NEUBAUER 
 
Mova a micropipeta de 20 µL para o tubo de ensaio clicando com o botão direito do 
mouse sobre ela e selecione a opção “Colocar sobre o tubo de ensaio”. 
 
 
 
Aspire 20 µL da amostra clicando com o botão direito do mouse sobre o êmbolo da 
pipeta. 
 
 
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Mova a micropipeta para a câmara de Neubauer clicando com o botão direito do mouse 
sobre ela e selecione a opção “Colocar sobre Neubauer”. 
 
 
 
Despreze a amostra na câmara de Neubauer clicando com o botão esquerdo do mouse 
sobre o êmbolo da pipeta. 
 
 
 
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Retorne a micropipeta para o suporte clicando com o botão direito do mouse sobre ela 
e selecione a opção “Retornar ao suporte”. 
 
 
 
Coloque a lamínula sobre a câmara de Neubauer clicando com o botão direito do mouse 
sobre ela. 
 
 
 
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4. OBSERVANDO OS RESULTADOS 
 
Mova a câmara de Neubauer para o microscópio clicando com o botão esquerdo do 
mouse sobre ela. 
 
 
 
Visualize o microscópio clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o 
nome “Microscópio” ou através do atalho do teclado “Alt+6”. 
 
 
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Movimente as lentes objetivas pressionando com o botão esquerdo do mouse sobre o 
revólver e movimentando o cursor à direita ou à esquerda. 
 
 
 
Se for necessário ajustar a iluminação, movimenteo diafragma pressionando com o 
botão esquerdo do mouse sobre ele e arrastando o cursor à direita ou à esquerda. 
 
 
 
 
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Realize o ajuste do foco pressionando o botão esquerdo do mouse sobre o parafuso 
macrométrico e movimentando o cursor à direita ou à esquerda. 
 
 
 
Para movimentar a lâmina à direita ou à esquerda, gire a peça inferior do charriot 
pressionando com o botão esquerdo do mouse sobre ela e movimentando o cursor à 
direita ou à esquerda. 
 
 
 
 
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Visualize a lâmina clicando com o botão esquerdo do mouse em “Ver ocular”. 
 
 
 
Realize as configurações necessárias no microscópio e observe as células na câmara de 
Neubauer utilizando as objetivas de 10x e 40x. 
 
 
 
 
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5. AVALIANDO OS RESULTADOS 
 
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responda de acordo com o que foi observado nos experimentos, associando também 
com os conhecimentos aprendidos sobre o tema. 
 
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